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Las plantas ornamentales con follaje exuberante son muy valoradas. Una forma de lograrlo es mediante el uso de reguladores de crecimiento vegetal como herramientas de gestión del crecimiento vegetal. El estudio se realizó en Schefflera dwarf (una planta ornamental) tratada con pulverizaciones foliares de ácido giberélico y hormona benciladenina en un invernadero equipado con un sistema de riego por nebulización. La hormona se pulverizó sobre las hojas de Schefflera dwarf en concentraciones de 0, 100 y 200 mg/l en tres etapas cada 15 días. El experimento se realizó sobre una base factorial en un diseño completamente aleatorizado con cuatro réplicas. La combinación de ácido giberélico y benciladenina a una concentración de 200 mg/l tuvo un efecto significativo en el número de hojas, el área foliar y la altura de la planta. Este tratamiento también resultó en el mayor contenido de pigmentos fotosintéticos. Además, las proporciones más altas de carbohidratos solubles y azúcares reductores se observaron con los tratamientos de 100 y 200 mg/L de benciladenina y 200 mg/L de giberelina + benciladenina. El análisis de regresión gradual mostró que el volumen de la raíz fue la primera variable en entrar en el modelo, explicando el 44% de la variación. La siguiente variable fue la masa fresca de la raíz, con el modelo bivariado explicando el 63% de la variación en el número de hojas. El mayor efecto positivo en el número de hojas lo ejerció el peso fresco de la raíz (0,43), que se correlacionó positivamente con el número de hojas (0,47). Los resultados mostraron que el ácido giberélico y la benciladenina a una concentración de 200 mg/l mejoraron significativamente el crecimiento morfológico, la síntesis de clorofila y carotenoides de Liriodendron tulipifera, y redujeron el contenido de azúcares y carbohidratos solubles.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr es una planta ornamental perenne de la familia Araliaceae, originaria de China y Taiwán¹. Esta planta se cultiva a menudo como planta de interior, pero solo una planta puede crecer en tales condiciones. Las hojas tienen de 5 a 16 folíolos, cada uno de 10 a 20 cm² de largo. La Schefflera enana se vende en grandes cantidades cada año, pero rara vez se utilizan métodos de jardinería modernos. Por lo tanto, el uso de reguladores del crecimiento vegetal como herramientas de gestión eficaces para mejorar el crecimiento y la producción sostenible de productos hortícolas requiere mayor atención. Hoy en día, el uso de reguladores del crecimiento vegetal ha aumentado significativamente¹,¹,¹. El ácido giberélico es un regulador del crecimiento vegetal que puede aumentar el rendimiento de las plantas¹. Uno de sus efectos conocidos es la estimulación del crecimiento vegetativo, incluyendo la elongación del tallo y la raíz y el aumento del área foliar¹. El efecto más significativo de las giberelinas es un aumento en la altura del tallo debido al alargamiento de los entrenudos. La pulverización foliar de giberelinas en plantas enanas que no producen giberelinas aumenta la elongación del tallo y la altura de la planta8. La pulverización foliar de flores y hojas con ácido giberélico a una concentración de 500 mg/l puede aumentar la altura, el número, el ancho y la longitud de las hojas9. Se ha descrito que las giberelinas estimulan el crecimiento de diversas plantas de hoja ancha10. Se observó elongación del tallo en pino silvestre (Pinus sylvestris) y abeto blanco (Piceaglauca) al pulverizar las hojas con ácido giberélico11.
Un estudio examinó los efectos de tres reguladores del crecimiento de las plantas de citoquinina en la formación de ramas laterales en Lily officinalis. Se realizaron experimentos en otoño y primavera para estudiar los efectos estacionales. Los resultados mostraron que la kinetina, la benciladenina y la 2-preniladenina no afectaron la formación de ramas adicionales. Sin embargo, 500 ppm de benciladenina resultaron en la formación de 12,2 y 8,2 ramas subsidiarias en los experimentos de otoño y primavera, respectivamente, en comparación con 4,9 y 3,9 ramas en las plantas de control. Los estudios han demostrado que los tratamientos de verano son más efectivos que los de invierno12. En otro experimento, se trataron plantas de Peace Lily var. Tassone con 0, 250 y 500 ppm de benciladenina en macetas de 10 cm de diámetro. Los resultados mostraron que el tratamiento del suelo aumentó significativamente el número de hojas adicionales en comparación con las plantas de control y las tratadas con benciladenina. Se observaron nuevas hojas adicionales cuatro semanas después del tratamiento, y la producción máxima de hojas se observó ocho semanas después del tratamiento. A las 20 semanas después del tratamiento, las plantas tratadas con suelo tuvieron una menor ganancia de altura que las plantas pretratadas13. Se ha informado que la benciladenina a una concentración de 20 mg/L puede aumentar significativamente la altura de la planta y el número de hojas en Croton 14. En los lirios de cala, la benciladenina a una concentración de 500 ppm resultó en un aumento en el número de ramas, mientras que el número de ramas fue el menor en el grupo de control15. El objetivo de este estudio fue investigar la pulverización foliar de ácido giberélico y benciladenina para mejorar el crecimiento de Schefflera dwarfa, una planta de follaje ornamental. Estos reguladores del crecimiento de las plantas pueden ayudar a los productores comerciales a planificar una producción adecuada durante todo el año. No se han realizado estudios para mejorar el crecimiento de Liriodendron tulipifera.
Este estudio se realizó en el invernadero de investigación de plantas de interior de la Universidad Islámica Azad en Jiloft, Irán. Se prepararon trasplantes de raíces enanas de Schefflera uniformes de 25 ± 5 cm de altura (se propagaron seis meses antes del experimento) y se sembraron en macetas. La maceta es de plástico negro, de 20 cm de diámetro y 30 cm de altura.
El medio de cultivo en este estudio fue una mezcla de turba, humus, arena lavada y cascarilla de arroz en una proporción de 1:1:1:1 (por volumen)16. Coloque una capa de guijarros en el fondo de la maceta para el drenaje. Las temperaturas promedio diurnas y nocturnas en el invernadero a fines de la primavera y el verano fueron de 32 ± 2 °C y 28 ± 2 °C, respectivamente. La humedad relativa varía a >70%. Use un sistema de nebulización para riego. En promedio, las plantas se riegan 12 veces al día. En otoño y verano, el tiempo de cada riego es de 8 minutos y el intervalo entre riegos es de 1 hora. Las plantas se cultivaron de manera similar cuatro veces, 2, 4, 6 y 8 semanas después de la siembra, con una solución de micronutrientes (Ghoncheh Co., Irán) a una concentración de 3 ppm y se regaron con 100 ml de solución cada vez. La solución nutritiva contiene N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm y oligoelementos Fe, Pb, Zn, Mn, Mo y B.
Se prepararon tres concentraciones de ácido giberélico y el regulador de crecimiento vegetal benciladenina (adquirido a Sigma) a 0, 100 y 200 mg/L, y se pulverizaron sobre las yemas de las plantas en tres etapas con un intervalo de 15 días17. Se utilizó Tween 20 (0,1 %) (adquirido a Sigma) en la solución para aumentar su longevidad y tasa de absorción. Temprano por la mañana, rocíe las hormonas sobre las yemas y hojas de Liriodendron tulipifera con un pulverizador. Las plantas se pulverizan con agua destilada.
Altura de planta, diámetro del tallo, área foliar, contenido de clorofila, número de entrenudos, longitud de ramas secundarias, número de ramas secundarias, volumen de raíz, longitud de raíz, masa de hoja, raíz, tallo y materia fresca seca, contenido de pigmentos fotosintéticos (clorofila a, clorofila b), clorofila total, carotenoides, pigmentos totales), azúcares reductores y carbohidratos solubles se midieron en los diferentes tratamientos.
El contenido de clorofila de las hojas jóvenes se midió 180 días después de la pulverización utilizando un medidor de clorofila (Spad CL-01) de 9:30 a 10 am (debido a la frescura de las hojas). Además, el área foliar se midió 180 días después de la pulverización. Pese tres hojas de la parte superior, media e inferior del tallo de cada maceta. Luego, estas hojas se utilizan como plantillas en papel A4 y se recorta el patrón resultante. También se midió el peso y el área superficial de una hoja de papel A4. Luego, se calculó el área de las hojas estampadas utilizando las proporciones. Además, se determinó el volumen de la raíz utilizando una probeta. El peso seco de la hoja, el peso seco del tallo, el peso seco de la raíz y el peso seco total de cada muestra se midieron mediante secado en horno a 72 °C durante 48 horas.
El contenido de clorofila y carotenoides se midió mediante el método de Lichtenthaler18. Para ello, se molieron 0,1 g de hojas frescas en un mortero de porcelana con 15 ml de acetona al 80 % y, tras filtrarlas, se midió su densidad óptica con un espectrofotómetro a longitudes de onda de 663,2, 646,8 y 470 nm. Se calibra el dispositivo con acetona al 80 %. Se calcula la concentración de pigmentos fotosintéticos mediante la siguiente ecuación:
Entre ellos, Chl a, Chl b, Chl T y Car representan clorofila a, clorofila b, clorofila total y carotenoides, respectivamente. Los resultados se presentan en mg/ml de planta.
Los azúcares reductores se midieron mediante el método Somogy19. Para ello, se muelen 0,02 g de brotes de plantas en un mortero de porcelana con 10 ml de agua destilada y se vierten en un vaso pequeño. Se calienta el vaso hasta que hierva y luego se filtra su contenido con papel de filtro Whatman n.º 1 para obtener un extracto vegetal. Se transfieren 2 ml de cada extracto a un tubo de ensayo y se añaden 2 ml de solución de sulfato de cobre. Se cubre el tubo de ensayo con algodón y se calienta al baño maría a 100 °C durante 20 minutos. En esta etapa, el Cu₂+ se convierte en Cu₂O por reducción de monosacáridos de aldehído y se observa un color salmón (color terracota) en el fondo del tubo de ensayo. Una vez enfriado el tubo de ensayo, se añaden 2 ml de ácido fosfomolíbdico y aparecerá un color azul. Se agita el tubo vigorosamente hasta que el color se distribuya uniformemente por todo el tubo. Se lee la absorbancia de la solución a 600 nm con un espectrofotómetro.
Calcule la concentración de azúcares reductores utilizando la curva estándar. La concentración de carbohidratos solubles se determinó mediante el método de Fales20. Para ello, se mezclaron 0,1 g de brotes con 2,5 ml de etanol al 80 % a 90 °C durante 60 min (dos etapas de 30 min cada una) para extraer los carbohidratos solubles. A continuación, se filtró el extracto y se evaporó el alcohol. El precipitado resultante se disolvió en 2,5 ml de agua destilada. Se vertieron 200 ml de cada muestra en un tubo de ensayo y se agregaron 5 ml de indicador de antrona. La mezcla se colocó en un baño maría a 90 °C durante 17 min y, tras enfriarse, se determinó su absorbancia a 625 nm.
El experimento fue un experimento factorial basado en un diseño completamente aleatorizado con cuatro réplicas. El procedimiento PROC UNIVARIATE se utiliza para examinar la normalidad de las distribuciones de datos antes del análisis de varianza. El análisis estadístico comenzó con un análisis estadístico descriptivo para comprender la calidad de los datos brutos recopilados. Los cálculos están diseñados para simplificar y comprimir grandes conjuntos de datos para que sean más fáciles de interpretar. Posteriormente se llevaron a cabo análisis más complejos. La prueba de Duncan se realizó utilizando el software SPSS (versión 24; IBM Corporation, Armonk, NY, EE. UU.) para calcular los cuadrados medios y los errores experimentales para determinar las diferencias entre los conjuntos de datos. La prueba múltiple de Duncan (DMRT) se utilizó para identificar diferencias entre las medias a un nivel de significancia de (0,05 ≤ p). El coeficiente de correlación de Pearson (r) se calculó utilizando el software SPSS (versión 26; IBM Corp., Armonk, NY, EE. UU.) para evaluar la correlación entre diferentes pares de parámetros. Además, se realizó un análisis de regresión lineal con el software SPSS (v.26) para predecir los valores de las variables del primer año a partir de los valores de las variables del segundo año. Por otro lado, se realizó un análisis de regresión gradual con p < 0,01 para identificar los rasgos que influyen críticamente en las hojas de Schefflera enana. Se realizó un análisis de trayectoria para determinar los efectos directos e indirectos de cada atributo en el modelo (con base en las características que mejor explican la variación). Todos los cálculos anteriores (normalidad de la distribución de datos, coeficiente de correlación simple, regresión gradual y análisis de trayectoria) se realizaron con el software SPSS v.26.
Las muestras de plantas cultivadas seleccionadas se ajustaron a las directrices institucionales, nacionales e internacionales pertinentes y a la legislación interna de Irán.
La Tabla 1 muestra estadísticas descriptivas de media, desviación estándar, mínimo, máximo, rango y coeficiente de variación fenotípico (CV) para varios rasgos. Entre estas estadísticas, el CV permite la comparación de atributos porque es adimensional. Los azúcares reductores (40.39%), peso seco de la raíz (37.32%), peso fresco de la raíz (37.30%), relación azúcar a azúcar (30.20%) y volumen de la raíz (30%) son los más altos. y el contenido de clorofila (9.88%). ) y el área foliar tienen el índice más alto (11.77%) y tienen el valor de CV más bajo. La Tabla 1 muestra que el peso húmedo total tiene el rango más alto. Sin embargo, este rasgo no tiene el CV más alto. Por lo tanto, se deben utilizar métricas adimensionales como el CV para comparar los cambios de atributos. Un CV alto indica una gran diferencia entre los tratamientos para este rasgo. Los resultados de este experimento mostraron grandes diferencias entre los tratamientos bajos en azúcar en peso seco de la raíz, peso fresco de la raíz, relación carbohidrato a azúcar y características de volumen de la raíz.
Los resultados del análisis de varianza mostraron que, en comparación con el control, la aspersión foliar con ácido giberélico y benciladenina tuvo un efecto significativo sobre la altura de la planta, número de hojas, área foliar, volumen de la raíz, longitud de la raíz, índice de clorofila, peso fresco y peso seco.
La comparación de los valores medios mostró que los reguladores del crecimiento vegetal tuvieron un efecto significativo en la altura de la planta y el número de hojas. Los tratamientos más efectivos fueron el ácido giberélico a una concentración de 200 mg/l y el ácido giberélico + benciladenina a una concentración de 200 mg/l. En comparación con el control, la altura de la planta y el número de hojas aumentaron 32,92 y 62,76 veces, respectivamente (Tabla 2).
El área foliar aumentó significativamente en todas las variantes en comparación con el control, con un aumento máximo observado a 200 mg/l de ácido giberélico, alcanzando 89,19 cm². Los resultados mostraron que el área foliar aumentó significativamente con el aumento de la concentración de regulador de crecimiento (Tabla 2).
Todos los tratamientos aumentaron significativamente el volumen y la longitud de la raíz en comparación con el control. La combinación de ácido giberélico + benciladenina tuvo el mayor efecto, aumentando el volumen y la longitud de la raíz a la mitad en comparación con el control (Tabla 2).
Los mayores valores de diámetro del tallo y longitud de entrenudos se observaron en los tratamientos control y ácido giberélico + benciladenina 200 mg/l, respectivamente.
El índice de clorofila aumentó en todas las variantes en comparación con el control. El valor más alto de este rasgo se observó en el tratamiento con ácido giberélico + benciladenina 200 mg/l, un 30,21 % superior al del control (Tabla 2).
Los resultados mostraron que el tratamiento resultó en diferencias significativas en el contenido de pigmentos, reducción de azúcares y carbohidratos solubles.
El tratamiento con ácido giberélico + benciladenina resultó en el máximo contenido de pigmentos fotosintéticos. Este indicador fue significativamente mayor en todas las variantes que en el control.
Los resultados mostraron que todos los tratamientos pudieron aumentar el contenido de clorofila de Schefflera dwarf. Sin embargo, el valor más alto de esta característica se observó en el tratamiento con ácido giberélico + benciladenina, que fue un 36,95 % superior al del control (Tabla 3).
Los resultados para la clorofila b fueron completamente similares a los resultados para la clorofila a, la única diferencia fue el incremento en el contenido de clorofila b, el cual fue 67,15% mayor que el control (Tabla 3).
El tratamiento resultó en un aumento significativo de la clorofila total en comparación con el control. El tratamiento con ácido giberélico 200 mg/l + benciladenina 100 mg/l produjo el valor más alto de esta característica, un 50 % superior al del control (Tabla 3). Según los resultados, el control y el tratamiento con benciladenina a una dosis de 100 mg/l produjeron las mayores tasas de esta característica. Liriodendron tulipifera presenta el mayor valor de carotenoides (Tabla 3).
Los resultados mostraron que cuando se trató con ácido giberélico a una concentración de 200 mg/L, el contenido de clorofila a aumentó significativamente a clorofila b (Fig. 1).
Efecto del ácido giberélico y la benciladenina en la proporción de a/b de Ch. de Schefflera enana. (GA3: ácido giberélico y BA: benciladenina). Las mismas letras en cada figura indican que no hay diferencia significativa (P < 0,01).
El efecto de cada tratamiento sobre el peso fresco y seco de la madera de schefflera enana fue significativamente mayor que el del control. El ácido giberélico + benciladenina a una dosis de 200 mg/l fue el tratamiento más eficaz, con un aumento del peso fresco del 138,45 % en comparación con el control. En comparación con el control, todos los tratamientos, excepto 100 mg/l de benciladenina, aumentaron significativamente el peso seco de la planta, y 200 mg/l de ácido giberélico + benciladenina presentaron el valor más alto para esta característica (Tabla 4).
La mayoría de las variantes diferían significativamente del control en este aspecto, siendo los valores más altos los de 100 y 200 mg/l de benciladenina y 200 mg/l de ácido giberélico + benciladenina (Fig. 2).
Influencia del ácido giberélico y la benciladenina en la proporción de carbohidratos solubles y azúcares reductores en la Schefflera enana. (GA3: ácido giberélico y BA: benciladenina). Las mismas letras en cada figura indican que no hay diferencia significativa (P < 0,01).
Se realizó un análisis de regresión gradual para determinar los atributos reales y comprender mejor la relación entre las variables independientes y el número de hojas en Liriodendron tulipifera. El volumen de la raíz fue la primera variable introducida en el modelo, explicando el 44% de la variación. La siguiente variable fue el peso fresco de la raíz, y ambas explicaron el 63% de la variación en el número de hojas (Tabla 5).
Se realizó un análisis de trayectoria para interpretar mejor la regresión gradual (Tabla 6 y Figura 3). El mayor efecto positivo en el número de hojas se asoció con la masa radicular fresca (0,43), que se correlacionó positivamente con el número de hojas (0,47). Esto indica que este rasgo afecta directamente el rendimiento, mientras que su efecto indirecto a través de otros rasgos es insignificante, y que este rasgo puede utilizarse como criterio de selección en programas de mejoramiento de schefflera enana. El efecto directo del volumen radicular fue negativo (−0,67). La influencia de este rasgo en el número de hojas es directa, mientras que la influencia indirecta es insignificante. Esto indica que a mayor volumen radicular, menor número de hojas.
La Figura 4 muestra los cambios en la regresión lineal del volumen radicular y los azúcares reductores. Según el coeficiente de regresión, cada unidad de cambio en la longitud radicular y los carbohidratos solubles implica cambios en el volumen radicular y los azúcares reductores de 0,6019 y 0,311 unidades.
El coeficiente de correlación de Pearson de los rasgos de crecimiento se muestra en la Figura 5. Los resultados mostraron que el número de hojas y la altura de la planta (0,379*) tuvieron la mayor correlación positiva y significancia.
Mapa de calor de las relaciones entre variables en los coeficientes de correlación de la tasa de crecimiento. # Eje Y: 1-Índice de crecimiento, 2-Entrenudo, 3-IAF, 4-N de hojas, 5-Altura de las patas, 6-Diámetro del tallo. # A lo largo del eje X: A – Índice de altura, B – distancia entre nudos, C – IAF, D – N de la hoja, E – altura de las patas, F – diámetro del tallo.
El coeficiente de correlación de Pearson para los atributos relacionados con el peso húmedo se muestra en la Figura 6. Los resultados muestran la relación entre el peso húmedo de las hojas y el peso seco aéreo (0,834**), el peso seco total (0,913**) y el peso seco de las raíces (0,562*). La masa seca total presenta la correlación positiva más alta y significativa con la masa seca de los brotes (0,790**) y la masa seca de las raíces (0,741**).
Mapa de calor de las relaciones entre las variables de coeficiente de correlación de peso fresco. Eje Y: 1 – peso de hojas frescas, 2 – peso de yemas frescas, 3 – peso de raíces frescas, 4 – peso total de hojas frescas. Eje X: A – peso de hojas frescas, B – peso de yemas frescas, CW – peso de raíces frescas, D – peso fresco total.
Los coeficientes de correlación de Pearson para los atributos relacionados con el peso seco se muestran en la Figura 7. Los resultados muestran que el peso seco de las hojas, el peso seco de las yemas (0,848**) y el peso seco total (0,947**), el peso seco de las yemas (0,854**) y la masa seca total (0,781**) tienen los valores más altos. correlación positiva y correlación significativa.
Mapa de calor de las relaciones entre las variables de coeficiente de correlación de peso seco. # Eje Y representa: 1-peso seco de hoja, 2-peso seco de yema, 3-peso seco de raíz, 4-peso seco total. # Eje X: A-peso seco de hoja, B-peso seco de yema, CW-peso seco de raíz, D-peso seco total.
El coeficiente de correlación de Pearson de las propiedades de los pigmentos se muestra en la Figura 8. Los resultados muestran que la clorofila a y la clorofila b (0,716**), la clorofila total (0,968**) y los pigmentos totales (0,954**); la clorofila b y la clorofila total (0,868**) y los pigmentos totales (0,851**); la clorofila total tiene la correlación positiva y significativa más alta con los pigmentos totales (0,984**).
Mapa de calor de las relaciones entre las variables del coeficiente de correlación de la clorofila. Ejes Y: 1- Canal a, 2- Canal b, 3- Relación a/b, 4- Canales. Total, 5- Carotenoides, 6- Producción de pigmentos. Ejes X: A- Ch. aB- Ch. b, C- Relación a/b, D- Ch. Contenido total, E- Carotenoides, F- Producción de pigmentos.
La Schefflera enana es una planta de interior popular en todo el mundo, y su crecimiento y desarrollo están recibiendo mucha atención actualmente. El uso de reguladores de crecimiento vegetal resultó en diferencias significativas, ya que todos los tratamientos aumentaron la altura de la planta en comparación con el control. Si bien la altura de la planta suele controlarse genéticamente, las investigaciones demuestran que la aplicación de reguladores de crecimiento vegetal puede aumentarla o disminuirla. La altura de la planta y el número de hojas tratados con ácido giberélico + benciladenina 200 mg/L fueron los más altos, alcanzando 109 cm y 38,25 cm, respectivamente. En consonancia con estudios previos (Salehi-Sardoei et al.52) y Spathiphyllum23, se observaron aumentos similares en la altura de la planta debido al tratamiento con ácido giberélico en caléndulas en maceta, albus alba21, azucenas de día22, azucenas de día, madera de agar y lirios de la paz.
El ácido giberélico (AG) desempeña un papel importante en diversos procesos fisiológicos de las plantas. Estimula la división celular, la elongación celular, la elongación del tallo y el aumento de tamaño24. El AG induce la división celular y la elongación en los ápices de los brotes y los meristemos25. Los cambios en las hojas también incluyen la disminución del grosor del tallo, un tamaño de hoja más pequeño y un color verde más brillante26. Estudios que utilizan factores inhibidores o estimuladores han demostrado que los iones de calcio de fuentes internas actúan como segundos mensajeros en la vía de señalización de la giberelina en la corola del sorgo27. El HA aumenta la longitud de la planta al estimular la síntesis de enzimas que causan la relajación de la pared celular, como XET o XTH, expansinas y PME28. Esto hace que las células se agranden a medida que la pared celular se relaja y el agua ingresa a la célula29. La aplicación de AG7, AG3 y AG4 puede aumentar la elongación del tallo30,31. El ácido giberélico causa elongación del tallo en plantas enanas, y en plantas rosetadas, el GA retrasa el crecimiento de las hojas y la elongación de los entrenudos32. Sin embargo, antes de la etapa reproductiva, la longitud del tallo aumenta de 4 a 5 veces su altura original33. El proceso de biosíntesis del GA en plantas se resume en la Figura 9.
Biosíntesis de GA en plantas y niveles de GA bioactivo endógeno, representación esquemática de plantas (derecha) y biosíntesis de GA (izquierda). Las flechas están codificadas por colores para corresponder a la forma de HA indicada a lo largo de la vía biosintética; las flechas rojas indican niveles disminuidos de GC debido a su localización en los órganos de la planta, y las flechas negras indican niveles aumentados de GC. En muchas plantas, como el arroz y la sandía, el contenido de GA es mayor en la base o parte inferior de la hoja30. Además, algunos informes indican que el contenido de GA bioactivo disminuye a medida que las hojas se alargan desde la base34. Se desconocen los niveles exactos de giberelinas en estos casos.
Los reguladores del crecimiento vegetal también influyen significativamente en el número y la superficie de las hojas. Los resultados mostraron que aumentar la concentración de reguladores del crecimiento vegetal resultó en un aumento significativo del área y la superficie foliar. Se ha reportado que la benciladenina aumenta la producción de hojas de cala15. Según los resultados de este estudio, todos los tratamientos mejoraron el área y la superficie foliar. El tratamiento con ácido giberélico y benciladenina fue el más efectivo y generó el mayor número y superficie de hojas. Al cultivar Schefflera enana en interiores, puede observarse un aumento notable en la superficie foliar.
El tratamiento con GA3 aumentó la longitud de los entrenudos en comparación con la benciladenina (BA) o ningún tratamiento hormonal. Este resultado es lógico dado el papel de GA en la promoción del crecimiento7. El crecimiento del tallo también mostró resultados similares. El ácido giberélico aumentó la longitud del tallo, pero disminuyó su diámetro. Sin embargo, la aplicación combinada de BA y GA3 aumentó significativamente la longitud del tallo. Este aumento fue mayor en comparación con las plantas tratadas con BA o sin la hormona. Aunque el ácido giberélico y las citoquininas (CK) generalmente promueven el crecimiento de las plantas, en algunos casos tienen efectos opuestos en diferentes procesos35. Por ejemplo, se observó una interacción negativa en el aumento de la longitud del hipocótilo en plantas tratadas con GA y BA36. Por otro lado, BA aumentó significativamente el volumen de la raíz (Tabla 1). Se ha informado de un aumento del volumen de la raíz debido a BA exógeno en muchas plantas (por ejemplo, especies de Dendrobium y Orchid)37,38.
Todos los tratamientos hormonales aumentaron el número de hojas nuevas. El aumento natural del área foliar y la longitud del tallo mediante tratamientos combinados es comercialmente deseable. El número de hojas nuevas es un indicador importante del crecimiento vegetativo. El uso de hormonas exógenas no se ha utilizado en la producción comercial de Liriodendron tulipifera. Sin embargo, los efectos promotores del crecimiento de GA y CK, aplicados en equilibrio, pueden proporcionar nuevos conocimientos para mejorar el cultivo de esta planta. En particular, el efecto sinérgico del tratamiento BA + GA3 fue mayor que el de GA o BA administrados solos. El ácido giberélico aumenta el número de hojas nuevas. A medida que se desarrollan hojas nuevas, aumentar el número de hojas nuevas puede limitar el crecimiento foliar39. Se ha informado que GA mejora el transporte de sacarosa desde los sumideros hasta los órganos fuente40,41. Además, la aplicación exógena de GA a plantas perennes puede promover el crecimiento de órganos vegetativos como hojas y raíces, previniendo así la transición del crecimiento vegetativo al crecimiento reproductivo42.
El efecto del ácido giberélico (AG) en el aumento de la materia seca de la planta se explica por un aumento en la fotosíntesis debido al aumento del área foliar43. Se reportó que el AG causa un aumento del área foliar del maíz34. Los resultados mostraron que aumentar la concentración de ácido giberélico (BA) a 200 mg/L podría aumentar la longitud y el número de ramas secundarias, así como el volumen de la raíz. El ácido giberélico influye en procesos celulares como la estimulación de la división y elongación celular, mejorando así el crecimiento vegetativo43. Además, el HA expande la pared celular al hidrolizar el almidón en azúcar, lo que reduce el potencial hídrico de la célula, lo que provoca la entrada de agua y, en última instancia, la elongación celular44.
Hora de publicación: 08 de mayo de 2024