Gracias por visitar Nature.com. La versión de su navegador tiene compatibilidad limitada con CSS. Para obtener mejores resultados, le recomendamos usar una versión más reciente de su navegador (o desactivar el Modo de compatibilidad en Internet Explorer). Mientras tanto, para garantizar la compatibilidad continua, mostramos el sitio sin estilos ni JavaScript.
Las plantas de follaje decorativo con una apariencia exuberante son muy apreciadas. Una forma de lograr esto es usarreguladores del crecimiento de las plantascomo herramientas de manejo del crecimiento de las plantas. El estudio se realizó en Schefflera dwarf (una planta ornamental de follaje) tratada con pulverizaciones foliares deácido giberélicoy la hormona benciladenina en un invernadero equipado con un sistema de riego por nebulización. La hormona se roció sobre las hojas de schefflera enana en concentraciones de 0, 100 y 200 mg/l en tres etapas cada 15 días. El experimento se realizó de forma factorial en un diseño completamente aleatorio con cuatro repeticiones. La combinación de ácido giberélico y benciladenina a una concentración de 200 mg/l tuvo un efecto significativo en el número de hojas, área foliar y altura de la planta. Este tratamiento también resultó en el mayor contenido de pigmentos fotosintéticos. Además, las mayores proporciones de carbohidratos solubles y azúcares reductores se observaron con benciladenina a 100 y 200 mg/L y ácido giberélico + benciladenina a 200 mg/L. El análisis de regresión escalonada mostró que el volumen de la raíz fue la primera variable en entrar en el modelo, explicando el 44% de la variación. La siguiente variable fue la masa fresca de la raíz, y el modelo bivariado explicó el 63% de la variación en el número de hojas. El mayor efecto positivo sobre el número de hojas fue ejercido por el peso fresco de la raíz (0,43), que se correlacionó positivamente con el número de hojas (0,47). Los resultados mostraron que el ácido giberélico y la benciladenina a una concentración de 200 mg/l mejoraron significativamente el crecimiento morfológico, la síntesis de clorofila y carotenoides de Liriodendron tulipifera, y redujeron el contenido de azúcares y carbohidratos solubles.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr es una planta ornamental perenne de la familia Araliaceae, originaria de China y Taiwán1. Esta planta se cultiva frecuentemente como planta de interior, pero solo puede crecer una planta en tales condiciones. Las hojas tienen de 5 a 16 folíolos, cada uno de 10-20 cm2 de largo. La Schefflera enana se vende en grandes cantidades cada año, pero rara vez se utilizan métodos de jardinería modernos. Por lo tanto, el uso de reguladores del crecimiento vegetal como herramientas de manejo efectivas para mejorar el crecimiento y la producción sostenible de productos hortícolas requiere mayor atención. Hoy en día, el uso de reguladores del crecimiento vegetal ha aumentado significativamente3,4,5. El ácido giberélico es un regulador del crecimiento vegetal que puede aumentar el rendimiento de las plantas6. Uno de sus efectos conocidos es la estimulación del crecimiento vegetativo, incluyendo la elongación del tallo y la raíz y el aumento del área foliar7. El efecto más significativo de las giberelinas es un aumento en la altura del tallo debido al alargamiento de los entrenudos. La pulverización foliar de giberelinas en plantas enanas que no pueden producir giberelinas produce un aumento en la elongación del tallo y la altura de la planta8. La pulverización foliar de flores y hojas con ácido giberélico a una concentración de 500 mg/l puede aumentar la altura de la planta, el número, el ancho y la longitud de las hojas9. Se ha informado que las giberelinas estimulan el crecimiento de varias plantas de hoja ancha10. Se observó elongación del tallo en el pino silvestre (Pinus sylvestris) y el abeto blanco (Picea glauca) cuando se rociaron las hojas con ácido giberélico11.
Un estudio examinó los efectos de tres reguladores del crecimiento vegetal de citoquinina en la formación de ramas laterales en Lily officinalis. Se realizaron experimentos en otoño y primavera para estudiar los efectos estacionales. Los resultados mostraron que la kinetina, la benciladenina y la 2-preniladenina no afectaron la formación de ramas adicionales. Sin embargo, 500 ppm de benciladenina dieron como resultado la formación de 12,2 y 8,2 ramas subsidiarias en los experimentos de otoño y primavera, respectivamente, en comparación con 4,9 y 3,9 ramas en las plantas de control. Los estudios han demostrado que los tratamientos de verano son más efectivos que los de invierno12. En otro experimento, las plantas de Peace Lily var. Tassone fueron tratadas con 0, 250 y 500 ppm de benciladenina en macetas de 10 cm de diámetro. Los resultados mostraron que el tratamiento del suelo aumentó significativamente el número de hojas adicionales en comparación con las plantas de control y las tratadas con benciladenina. Se observaron nuevas hojas adicionales cuatro semanas después del tratamiento, y la producción máxima de hojas se observó ocho semanas después del tratamiento. A las 20 semanas posteriores al tratamiento, las plantas tratadas en el suelo tuvieron una menor ganancia de altura que las plantas pretratadas13. Se ha informado que la benciladenina a una concentración de 20 mg/L puede aumentar significativamente la altura de la planta y el número de hojas en Croton 14. En los lirios cala, la benciladenina a una concentración de 500 ppm resultó en un aumento en el número de ramas, mientras que el número de ramas fue el menor en el grupo de control15. El objetivo de este estudio fue investigar la pulverización foliar de ácido giberélico y benciladenina para mejorar el crecimiento de Schefflera dwarfa, una planta ornamental. Estos reguladores del crecimiento vegetal pueden ayudar a los productores comerciales a planificar una producción adecuada durante todo el año. No se han realizado estudios para mejorar el crecimiento de Liriodendron tulipifera.
Este estudio se llevó a cabo en el invernadero de investigación de plantas de interior de la Universidad Islámica Azad en Jiloft, Irán. Se prepararon trasplantes de raíces uniformes de schefflera enana de 25 ± 5 cm de altura (propagados seis meses antes del experimento) y se sembraron en macetas. La maceta es de plástico, negra, con un diámetro de 20 cm y una altura de 30 cm16.
El medio de cultivo en este estudio fue una mezcla de turba, humus, arena lavada y cáscara de arroz en una proporción de 1:1:1:1 (en volumen)16. Coloque una capa de guijarros en el fondo de la maceta para drenaje. Las temperaturas promedio diurnas y nocturnas en el invernadero a finales de primavera y verano fueron 32±2°C y 28±2°C, respectivamente. La humedad relativa varía a >70%. Utilice un sistema de nebulización para el riego. En promedio, las plantas se riegan 12 veces al día. En otoño y verano, el tiempo de cada riego es de 8 minutos, el intervalo de riego es de 1 hora. Las plantas se cultivaron de manera similar cuatro veces, 2, 4, 6 y 8 semanas después de la siembra, con una solución de micronutrientes (Ghoncheh Co., Irán) a una concentración de 3 ppm y se regaron con 100 ml de solución cada vez. La solución nutritiva contiene 8 ppm de N, 4 ppm de P, 5 ppm de K y oligoelementos como Fe, Pb, Zn, Mn, Mo y B.
Se prepararon tres concentraciones de ácido giberélico y el regulador de crecimiento vegetal benciladenina (adquirido en Sigma) a 0, 100 y 200 mg/L y se rociaron sobre los brotes de las plantas en tres etapas con un intervalo de 15 días17. Se utilizó Tween 20 (0,1 %) (adquirido en Sigma) en la solución para aumentar su longevidad y tasa de absorción. Temprano en la mañana, rocíe las hormonas sobre los brotes y hojas de Liriodendron tulipifera usando un rociador. Las plantas se rocían con agua destilada.
En diferentes tratamientos se midieron la altura de la planta, el diámetro del tallo, el área foliar, el contenido de clorofila, el número de entrenudos, la longitud de las ramas secundarias, el número de ramas secundarias, el volumen de la raíz, la longitud de la raíz, la masa de la hoja, la raíz, el tallo y la materia seca fresca, el contenido de pigmentos fotosintéticos (clorofila a, clorofila b, clorofila total, carotenoides, pigmentos totales), azúcares reductores y carbohidratos solubles.
El contenido de clorofila de las hojas jóvenes se midió 180 días después de la pulverización utilizando un medidor de clorofila (Spad CL-01) de 9:30 a 10:00 (debido a la frescura de las hojas). Además, se midió el área foliar 180 días después de la pulverización. Se pesaron tres hojas de la parte superior, media e inferior del tallo de cada maceta. Estas hojas se utilizaron como plantillas en papel A4 y se recortó el patrón resultante. También se midieron el peso y el área superficial de una hoja de papel A4. Luego se calculó el área de las hojas con la plantilla utilizando las proporciones. Adicionalmente, se determinó el volumen de la raíz utilizando una probeta graduada. El peso seco de la hoja, el peso seco del tallo, el peso seco de la raíz y el peso seco total de cada muestra se midieron mediante secado en horno a 72 °C durante 48 horas.
El contenido de clorofila y carotenoides se midió mediante el método de Lichtenthaler¹⁸. Para ello, se molieron 0,1 g de hojas frescas en un mortero de porcelana con 15 ml de acetona al 80 % y, tras filtrar, se midió su densidad óptica con un espectrofotómetro a longitudes de onda de 663,2, 646,8 y 470 nm. Calibre el aparato con acetona al 80 %. Calcule la concentración de pigmentos fotosintéticos mediante la siguiente ecuación:
Entre ellos, Chl a, Chl b, Chl T y Car representan la clorofila a, la clorofila b, la clorofila total y los carotenoides, respectivamente. Los resultados se presentan en mg/ml de planta.
Los azúcares reductores se midieron utilizando el método Somogy19. Para ello, se muelen 0,02 g de brotes de plantas en un mortero de porcelana con 10 ml de agua destilada y se vierten en un vaso pequeño. Se calienta el vaso hasta que hierva y luego se filtra el contenido con papel de filtro Whatman n.° 1 para obtener un extracto vegetal. Se transfieren 2 ml de cada extracto a un tubo de ensayo y se añaden 2 ml de solución de sulfato de cobre. Se cubre el tubo de ensayo con algodón y se calienta en un baño de agua a 100 °C durante 20 minutos. En esta etapa, el Cu2+ se convierte en Cu2O por reducción del monosacárido aldehído y se observa un color salmón (terracota) en el fondo del tubo de ensayo. Una vez que el tubo de ensayo se ha enfriado, se añaden 2 ml de ácido fosfomolíbdico y aparecerá un color azul. Se agita el tubo vigorosamente hasta que el color se distribuya uniformemente por todo el tubo. Se lee la absorbancia de la solución a 600 nm utilizando un espectrofotómetro.
Calcular la concentración de azúcares reductores utilizando la curva estándar. La concentración de carbohidratos solubles se determinó mediante el método de Fales20. Para ello, se mezclaron 0,1 g de brotes con 2,5 ml de etanol al 80 % a 90 °C durante 60 min (dos etapas de 30 min cada una) para extraer los carbohidratos solubles. El extracto se filtró y el alcohol se evaporó. El precipitado resultante se disolvió en 2,5 ml de agua destilada. Verter 200 ml de cada muestra en un tubo de ensayo y añadir 5 ml de indicador de antrona. La mezcla se colocó en un baño de agua a 90 °C durante 17 min y, tras enfriarse, se determinó su absorbancia a 625 nm.
El experimento fue un experimento factorial basado en un diseño completamente aleatorio con cuatro repeticiones. El procedimiento PROC UNIVARIATE se utiliza para examinar la normalidad de las distribuciones de datos antes del análisis de varianza. El análisis estadístico comenzó con un análisis estadístico descriptivo para comprender la calidad de los datos brutos recopilados. Los cálculos están diseñados para simplificar y comprimir grandes conjuntos de datos para que sean más fáciles de interpretar. Posteriormente, se llevaron a cabo análisis más complejos. La prueba de Duncan se realizó utilizando el software SPSS (versión 24; IBM Corporation, Armonk, NY, EE. UU.) para calcular los cuadrados medios y los errores experimentales para determinar las diferencias entre los conjuntos de datos. La prueba múltiple de Duncan (DMRT) se utilizó para identificar diferencias entre medias a un nivel de significancia de (0,05 ≤ p). El coeficiente de correlación de Pearson (r) se calculó utilizando el software SPSS (versión 26; IBM Corp., Armonk, NY, EE. UU.) para evaluar la correlación entre diferentes pares de parámetros. Además, se realizó un análisis de regresión lineal con el software SPSS (v.26) para predecir los valores de las variables del primer año a partir de los valores de las variables del segundo año. Por otro lado, se realizó un análisis de regresión escalonada con p < 0,01 para identificar los rasgos que influyen críticamente en las hojas de la schefflera enana. Se llevó a cabo un análisis de trayectorias para determinar los efectos directos e indirectos de cada atributo en el modelo (según las características que mejor explican la variación). Todos los cálculos anteriores (normalidad de la distribución de datos, coeficiente de correlación simple, regresión escalonada y análisis de trayectorias) se realizaron con el software SPSS v.26.
Las muestras de plantas cultivadas seleccionadas cumplían con las directrices institucionales, nacionales e internacionales pertinentes y con la legislación interna de Irán.
La Tabla 1 muestra estadísticas descriptivas de media, desviación estándar, mínimo, máximo, rango y coeficiente de variación fenotípico (CV) para varios rasgos. Entre estas estadísticas, el CV permite la comparación de atributos porque es adimensional. Los azúcares reductores (40,39%), peso seco de la raíz (37,32%), peso fresco de la raíz (37,30%), relación azúcar/azúcar (30,20%) y volumen de la raíz (30%) son los más altos. y contenido de clorofila (9,88%). ) y área foliar tienen el índice más alto (11,77%) y tienen el valor de CV más bajo. La Tabla 1 muestra que el peso húmedo total tiene el rango más alto. Sin embargo, este rasgo no tiene el CV más alto. Por lo tanto, las métricas adimensionales como el CV deben usarse para comparar cambios de atributos. Un CV alto indica una gran diferencia entre tratamientos para este rasgo. Los resultados de este experimento mostraron grandes diferencias entre tratamientos de bajo azúcar en peso seco de la raíz, peso fresco de la raíz, relación carbohidrato/azúcar y características de volumen de la raíz.
Los resultados del análisis ANOVA mostraron que, en comparación con el grupo de control, la pulverización foliar con ácido giberélico y benciladenina tuvo un efecto significativo en la altura de la planta, el número de hojas, el área foliar, el volumen de la raíz, la longitud de la raíz, el índice de clorofila, el peso fresco y el peso seco.
La comparación de los valores medios mostró que los reguladores del crecimiento vegetal tuvieron un efecto significativo en la altura de la planta y el número de hojas. Los tratamientos más efectivos fueron el ácido giberélico a una concentración de 200 mg/l y el ácido giberélico + benciladenina a una concentración de 200 mg/l. En comparación con el control, la altura de la planta y el número de hojas aumentaron 32,92 y 62,76 veces, respectivamente (Tabla 2).
El área foliar aumentó significativamente en todas las variantes en comparación con el control, observándose el máximo incremento a 200 mg/l de ácido giberélico, alcanzando los 89,19 cm². Los resultados mostraron que el área foliar aumentó significativamente con el incremento de la concentración del regulador de crecimiento (Tabla 2).
Todos los tratamientos aumentaron significativamente el volumen y la longitud de la raíz en comparación con el grupo control. La combinación de ácido giberélico y benciladenina tuvo el mayor efecto, incrementando el volumen y la longitud de la raíz a la mitad en comparación con el grupo control (Tabla 2).
Los valores más altos de diámetro del tallo y longitud del entrenudo se observaron en los tratamientos de control y de ácido giberélico + benciladenina 200 mg/l, respectivamente.
El índice de clorofila aumentó en todas las variantes en comparación con el control. El valor más alto de este rasgo se observó al tratar con ácido giberélico + benciladenina 200 mg/l, que fue un 30,21 % superior al del control (Tabla 2).
Los resultados mostraron que el tratamiento produjo diferencias significativas en el contenido de pigmentos, así como una reducción de azúcares y carbohidratos solubles.
El tratamiento con ácido giberélico + benciladenina dio como resultado el máximo contenido de pigmentos fotosintéticos. Este valor fue significativamente mayor en todas las variantes que en el grupo control.
Los resultados mostraron que todos los tratamientos podían aumentar el contenido de clorofila de Schefflera dwarf. Sin embargo, el valor más alto de este rasgo se observó en el tratamiento con ácido giberélico + benciladenina, que fue un 36,95 % superior al del control (Tabla 3).
Los resultados para la clorofila b fueron completamente similares a los resultados para la clorofila a, la única diferencia fue el aumento en el contenido de clorofila b, que fue un 67,15% mayor que en el control (Tabla 3).
El tratamiento produjo un aumento significativo en la clorofila total en comparación con el control. El tratamiento con ácido giberélico 200 mg/l + benciladenina 100 mg/l produjo el valor más alto de este rasgo, que fue un 50 % superior al del control (Tabla 3). Según los resultados, el control y el tratamiento con benciladenina a una dosis de 100 mg/l produjeron los valores más altos de este rasgo. Liriodendron tulipifera presenta el valor más alto de carotenoides (Tabla 3).
Los resultados mostraron que cuando se trató con ácido giberélico a una concentración de 200 mg/L, el contenido de clorofila a aumentó significativamente a clorofila b (Fig. 1).
Efecto del ácido giberélico y la benciladenina sobre las proporciones a/b de Schefflera enana. (GA3: ácido giberélico y BA: benciladenina). Las mismas letras en cada figura indican que la diferencia no es significativa (P < 0,01).
El efecto de cada tratamiento sobre el peso fresco y seco de la madera de schefflera enana fue significativamente mayor que el del control. El tratamiento con ácido giberélico + benciladenina a 200 mg/L fue el más efectivo, incrementando el peso fresco en un 138,45% en comparación con el control. En comparación con el control, todos los tratamientos, excepto el de 100 mg/L de benciladenina, aumentaron significativamente el peso seco de la planta, y el tratamiento con ácido giberélico + benciladenina a 200 mg/L produjo el valor más alto para esta característica (Tabla 4).
La mayoría de las variantes difirieron significativamente del control en este aspecto, con los valores más altos pertenecientes a 100 y 200 mg/l de benciladenina y 200 mg/l de ácido giberélico + benciladenina (Fig. 2).
Influencia del ácido giberélico y la benciladenina en la proporción de carbohidratos solubles y azúcares reductores en la schefflera enana. (GA3: ácido giberélico y BA: benciladenina). Las mismas letras en cada figura indican que no existe diferencia significativa (P < 0,01).
Se realizó un análisis de regresión escalonada para determinar los atributos reales y comprender mejor la relación entre las variables independientes y el número de hojas en Liriodendron tulipifera. El volumen de la raíz fue la primera variable introducida en el modelo, explicando el 44% de la variación. La siguiente variable fue el peso fresco de la raíz, y estas dos variables explicaron el 63% de la variación en el número de hojas (Tabla 5).
Se realizó un análisis de ruta para interpretar mejor la regresión escalonada (Tabla 6 y Figura 3). El mayor efecto positivo sobre el número de hojas se asoció con la masa fresca de la raíz (0,43), que se correlacionó positivamente con el número de hojas (0,47). Esto indica que este rasgo afecta directamente el rendimiento, mientras que su efecto indirecto a través de otros rasgos es insignificante, y que este rasgo puede usarse como criterio de selección en programas de mejoramiento para schefflera enana. El efecto directo del volumen de la raíz fue negativo (−0,67). La influencia de este rasgo sobre el número de hojas es directa, la influencia indirecta es insignificante. Esto indica que cuanto mayor es el volumen de la raíz, menor es el número de hojas.
La figura 4 muestra los cambios en la regresión lineal del volumen de la raíz y los azúcares reductores. Según el coeficiente de regresión, cada unidad de cambio en la longitud de la raíz y los carbohidratos solubles implica que el volumen de la raíz y los azúcares reductores cambian en 0,6019 y 0,311 unidades, respectivamente.
El coeficiente de correlación de Pearson de los rasgos de crecimiento se muestra en la Figura 5. Los resultados mostraron que el número de hojas y la altura de la planta (0,379*) tuvieron la correlación positiva más alta y significativa.
Mapa de calor de las relaciones entre variables en los coeficientes de correlación de la tasa de crecimiento. # Eje Y: 1-Índice Ch., 2-Entrenudo, 3-LAI, 4-N de hojas, 5-Altura de las piernas, 6-Diámetro del tallo. # A lo largo del eje X: A – índice H., B – distancia entre nudos, C – LAY, D – N. de la hoja, E – altura de la pierna del pantalón, F – diámetro del tallo.
El coeficiente de correlación de Pearson para los atributos relacionados con el peso húmedo se muestra en la Figura 6. Los resultados muestran la relación entre el peso húmedo de la hoja y el peso seco aéreo (0,834**), el peso seco total (0,913**) y el peso seco de la raíz (0,562*). La masa seca total tiene la correlación positiva más alta y significativa con la masa seca del tallo (0,790**) y la masa seca de la raíz (0,741**).
Mapa de calor de las relaciones entre las variables del coeficiente de correlación del peso fresco. # Eje Y: 1 – peso de las hojas frescas, 2 – peso de los brotes frescos, 3 – peso de las raíces frescas, 4 – peso total de las hojas frescas. # El eje X representa: A – peso de las hojas frescas, B – peso de los brotes frescos, CW – peso de las raíces frescas, D – peso total fresco.
Los coeficientes de correlación de Pearson para los atributos relacionados con el peso seco se muestran en la Figura 7. Los resultados muestran que el peso seco de la hoja, el peso seco del brote (0,848**) y el peso seco total (0,947**), el peso seco del brote (0,854**) y la masa seca total (0,781**) tienen los valores más altos de correlación positiva y correlación significativa.
Mapa de calor de las relaciones entre las variables del coeficiente de correlación del peso seco. # El eje Y representa: 1-peso seco de la hoja, 2-peso seco del brote, 3-peso seco de la raíz, 4-peso seco total. # El eje X representa: A-peso seco de la hoja, B-peso seco del brote, CW-peso seco de la raíz, D-peso seco total.
El coeficiente de correlación de Pearson de las propiedades de los pigmentos se muestra en la Figura 8. Los resultados muestran que la clorofila a y la clorofila b (0,716**), la clorofila total (0,968**) y los pigmentos totales (0,954**); la clorofila b y la clorofila total (0,868**) y los pigmentos totales (0,851**); la clorofila total tiene la correlación positiva y significativa más alta con los pigmentos totales (0,984**).
Mapa de calor de las relaciones entre las variables del coeficiente de correlación de la clorofila. # Ejes Y: 1- Canal a, 2- Canal b, 3- Relación a/b, 4- Canales. Total, 5- Carotenoides, 6- Pigmentos de rendimiento. # Ejes X: A-Ch. a, B-Ch. b, C- Relación a/b, D-Ch. Contenido total, E- Carotenoides, F- Rendimiento de pigmentos.
La Schefflera enana es una planta de interior popular en todo el mundo, y su crecimiento y desarrollo están recibiendo mucha atención actualmente. El uso de reguladores del crecimiento vegetal produjo diferencias significativas, con todos los tratamientos aumentando la altura de la planta en comparación con el control. Aunque la altura de la planta generalmente se controla genéticamente, la investigación muestra que la aplicación de reguladores del crecimiento vegetal puede aumentar o disminuir la altura de la planta. La altura de la planta y el número de hojas tratadas con ácido giberélico + benciladenina 200 mg/L fueron los más altos, alcanzando 109 cm y 38,25, respectivamente. En consonancia con estudios previos (SalehiSardoei et al.52) y Spathiphyllum23, se observaron aumentos similares en la altura de la planta debido al tratamiento con ácido giberélico en caléndulas en maceta, albus alba21, lirios de día22, lirios de día, madera de agar y lirios de la paz.
El ácido giberélico (GA) desempeña un papel importante en varios procesos fisiológicos de las plantas. Estimula la división celular, la elongación celular, la elongación del tallo y el aumento de tamaño24. El GA induce la división y elongación celular en los ápices de los brotes y los meristemos25. Los cambios en las hojas también incluyen una disminución del grosor del tallo, un tamaño de hoja más pequeño y un color verde más brillante26. Estudios que utilizan factores inhibidores o estimuladores han demostrado que los iones de calcio de fuentes internas actúan como segundos mensajeros en la vía de señalización de la giberelina en la corola del sorgo27. El HA aumenta la longitud de la planta al estimular la síntesis de enzimas que causan la relajación de la pared celular, como XET o XTH, expansinas y PME28. Esto hace que las células se agranden a medida que la pared celular se relaja y el agua entra en la célula29. La aplicación de GA7, GA3 y GA4 puede aumentar la elongación del tallo30,31. El ácido giberélico provoca el alargamiento del tallo en plantas enanas, y en plantas en roseta retarda el crecimiento de las hojas y el alargamiento de los entrenudos32. Sin embargo, antes de la etapa reproductiva, la longitud del tallo aumenta hasta 4-5 veces su altura original33. El proceso de biosíntesis de GA en las plantas se resume en la Figura 9.
Biosíntesis de GA en plantas y niveles de GA bioactiva endógena, representación esquemática de plantas (derecha) y biosíntesis de GA (izquierda). Las flechas están codificadas por colores para corresponder a la forma de HA indicada a lo largo de la vía biosintética; las flechas rojas indican niveles disminuidos de GC debido a la localización en los órganos de la planta, y las flechas negras indican niveles aumentados de GC. En muchas plantas, como el arroz y la sandía, el contenido de GA es mayor en la base o parte inferior de la hoja30. Además, algunos informes indican que el contenido de GA bioactiva disminuye a medida que las hojas se alargan desde la base34. Se desconocen los niveles exactos de giberelinas en estos casos.
Los reguladores del crecimiento vegetal también influyen significativamente en el número y área de las hojas. Los resultados mostraron que aumentar la concentración del regulador del crecimiento vegetal resultó en un aumento significativo en el área y el número de hojas. Se ha informado que la benciladenina aumenta la producción de hojas de cala15. Según los resultados de este estudio, todos los tratamientos mejoraron el área y el número de hojas. El ácido giberélico + benciladenina fue el tratamiento más efectivo y resultó en el mayor número y área de hojas. Cuando se cultiva schefflera enana en interiores, puede haber un aumento notable en el número de hojas.
El tratamiento con GA3 aumentó la longitud del entrenudo en comparación con la benciladenina (BA) o la ausencia de tratamiento hormonal. Este resultado es lógico dado el papel de la GA en la promoción del crecimiento7. El crecimiento del tallo también mostró resultados similares. El ácido giberélico aumentó la longitud del tallo pero disminuyó su diámetro. Sin embargo, la aplicación combinada de BA y GA3 aumentó significativamente la longitud del tallo. Este aumento fue mayor en comparación con las plantas tratadas con BA o sin la hormona. Aunque el ácido giberélico y las citoquininas (CK) generalmente promueven el crecimiento de las plantas, en algunos casos tienen efectos opuestos en diferentes procesos35. Por ejemplo, se observó una interacción negativa en el aumento de la longitud del hipocótilo en plantas tratadas con GA y BA36. Por otro lado, la BA aumentó significativamente el volumen de la raíz (Tabla 1). Se ha informado de un aumento del volumen de la raíz debido a la BA exógena en muchas plantas (por ejemplo, especies de Dendrobium y Orchid)37,38.
Todos los tratamientos hormonales aumentaron el número de hojas nuevas. El aumento natural del área foliar y la longitud del tallo mediante tratamientos combinados es comercialmente deseable. El número de hojas nuevas es un indicador importante del crecimiento vegetativo. El uso de hormonas exógenas no se ha utilizado en la producción comercial de Liriodendron tulipifera. Sin embargo, los efectos promotores del crecimiento de GA y CK, aplicados en equilibrio, pueden proporcionar nuevas perspectivas para mejorar el cultivo de esta planta. Cabe destacar que el efecto sinérgico del tratamiento BA + GA3 fue mayor que el de GA o BA administrados por separado. El ácido giberélico aumenta el número de hojas nuevas. A medida que se desarrollan las hojas nuevas, el aumento del número de hojas nuevas puede limitar el crecimiento foliar39. Se ha informado que GA mejora el transporte de sacarosa desde los órganos sumideros a los órganos fuente40,41. Además, la aplicación exógena de GA a plantas perennes puede promover el crecimiento de órganos vegetativos como hojas y raíces, previniendo así la transición del crecimiento vegetativo al crecimiento reproductivo42.
El efecto del GA en el aumento de la materia seca de la planta puede explicarse por un aumento en la fotosíntesis debido a un aumento en el área foliar43. Se informó que el GA causa un aumento en el área foliar del maíz34. Los resultados mostraron que aumentar la concentración de BA a 200 mg/L podría aumentar la longitud y el número de ramas secundarias y el volumen de la raíz. El ácido giberélico influye en procesos celulares como la estimulación de la división y elongación celular, mejorando así el crecimiento vegetativo43. Además, el HA expande la pared celular hidrolizando el almidón en azúcar, reduciendo así el potencial hídrico de la célula, lo que provoca que el agua entre en la célula y, en última instancia, conduce a la elongación celular44.
Fecha de publicación: 11 de junio de 2024