Gracias por visitar Nature.com. La versión del navegador que está utilizando tiene soporte CSS limitado. Para obtener mejores resultados, le recomendamos que utilice una versión más reciente de su navegador (o deshabilite el Modo de compatibilidad en Internet Explorer). Mientras tanto, para garantizar un soporte continuo, mostramos el sitio sin estilo ni JavaScript.
Se valoran mucho las plantas de follaje decorativo con un aspecto exuberante. Una forma de lograrlo es utilizarreguladores del crecimiento de las plantascomo herramientas de gestión del crecimiento vegetal. El estudio se realizó en Schefflera enana (una planta de follaje ornamental) tratada con aspersiones foliares deácido giberélicoy hormona benciladenina en un invernadero equipado con un sistema de riego por nebulización. La hormona se roció sobre las hojas de schefflera enana en concentraciones de 0, 100 y 200 mg/l en tres etapas cada 15 días. El experimento se realizó en forma factorial en un diseño completamente al azar con cuatro repeticiones. La combinación de ácido giberélico y benciladenina a una concentración de 200 mg/l tuvo un efecto significativo sobre el número de hojas, el área foliar y la altura de la planta. Este tratamiento también resultó en el mayor contenido de pigmentos fotosintéticos. Además, las proporciones más altas de carbohidratos solubles y azúcares reductores se observaron con benciladenina a 100 y 200 mg/L y ácido giberélico + benciladenina a 200 mg/L. El análisis de regresión por pasos mostró que el volumen de la raíz fue la primera variable en ingresar al modelo, explicando el 44% de la variación. La siguiente variable fue la masa de raíces frescas, explicando el modelo bivariado el 63% de la variación en el número de hojas. El mayor efecto positivo sobre el número de hojas lo ejerció el peso de raíces frescas (0,43), que se correlacionó positivamente con el número de hojas (0,47). Los resultados mostraron que el ácido giberélico y la benciladenina en una concentración de 200 mg/l mejoraron significativamente el crecimiento morfológico, la síntesis de clorofila y carotenoides de Liriodendron tulipifera, y redujeron el contenido de azúcares y carbohidratos solubles.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr es una planta ornamental de hoja perenne de la familia Araliaceae, originaria de China y Taiwán1. Esta planta a menudo se cultiva como planta de interior, pero solo una planta puede crecer en tales condiciones. Las hojas tienen de 5 a 16 folíolos, cada uno de 10 a 20 cm2 de largo. La Schefflera enana se vende en grandes cantidades cada año, pero rara vez se utilizan métodos de jardinería modernos. Por lo tanto, el uso de reguladores del crecimiento vegetal como herramientas de gestión eficaces para mejorar el crecimiento y la producción sostenible de productos hortícolas requiere más atención. Hoy en día, el uso de reguladores del crecimiento vegetal ha aumentado significativamente3,4,5. El ácido giberélico es un regulador del crecimiento de las plantas que puede aumentar el rendimiento de las plantas6. Uno de sus efectos conocidos es la estimulación del crecimiento vegetativo, incluido el alargamiento del tallo y las raíces y el aumento del área foliar7. El efecto más significativo de las giberelinas es un aumento en la altura del tallo debido al alargamiento de los entrenudos. La pulverización foliar de giberelinas en plantas enanas que no pueden producir giberelinas da como resultado un aumento del alargamiento del tallo y la altura de la planta8. La pulverización foliar de flores y hojas con ácido giberélico a una concentración de 500 mg/l puede aumentar la altura, el número, el ancho y la longitud de las hojas de las plantas9. Se ha informado que las giberelinas estimulan el crecimiento de varias plantas de hoja ancha10. Se observó elongación del tallo en pino silvestre (Pinussylvestris) y abeto blanco (Piceaglauca) cuando las hojas fueron rociadas con ácido giberélico11.
Un estudio examinó los efectos de tres reguladores del crecimiento de las plantas con citoquininas sobre la formación de ramas laterales en Lily officinalis. Bend Se realizaron experimentos en otoño y primavera para estudiar los efectos estacionales. Los resultados mostraron que la cinetina, la benciladenina y la 2-preniladenina no afectaron la formación de ramas adicionales. Sin embargo, 500 ppm de benciladenina dieron como resultado la formación de 12,2 y 8,2 ramas subsidiarias en los experimentos de otoño y primavera, respectivamente, en comparación con 4,9 y 3,9 ramas en las plantas de control. Los estudios han demostrado que los tratamientos de verano son más eficaces que los de invierno12. En otro experimento, Peace Lily var. Las plantas de Tassone se trataron con 0, 250 y 500 ppm de benciladenina en macetas de 10 cm de diámetro. Los resultados mostraron que el tratamiento del suelo aumentó significativamente el número de hojas adicionales en comparación con las plantas de control y tratadas con benciladenina. Se observaron nuevas hojas adicionales cuatro semanas después del tratamiento y la producción máxima de hojas se observó ocho semanas después del tratamiento. A las 20 semanas después del tratamiento, las plantas tratadas con suelo tuvieron menos aumento de altura que las plantas pretratadas13. Se ha informado que la benciladenina en una concentración de 20 mg/L puede aumentar significativamente la altura de la planta y el número de hojas en Croton 14. En los alcatraces, la benciladenina en una concentración de 500 ppm resultó en un aumento en el número de ramas, mientras que el número de sucursales fue menor en el grupo de control15. El objetivo de este estudio fue investigar la pulverización foliar de ácido giberélico y benciladenina para mejorar el crecimiento de Schefflera dwarfa, una planta ornamental. Estos reguladores del crecimiento de las plantas pueden ayudar a los productores comerciales a planificar una producción adecuada durante todo el año. No se han realizado estudios para mejorar el crecimiento de Liriodendron tulipifera.
Este estudio se realizó en el invernadero de investigación de plantas de interior de la Universidad Islámica Azad en Jiloft, Irán. Se prepararon trasplantes de raíces uniformes de schefflera enana de 25 ± 5 cm de altura (se propagaron seis meses antes del experimento) y se sembraron en macetas. La maceta es de plástico, negra, con un diámetro de 20 cm y una altura de 30 cm16.
El medio de cultivo en este estudio fue una mezcla de turba, humus, arena lavada y cáscara de arroz en una proporción de 1:1:1:1 (en volumen)16. Coloque una capa de guijarros en el fondo de la maceta para que drene. Las temperaturas medias diurnas y nocturnas en el invernadero a finales de primavera y verano fueron de 32±2°C y 28±2°C, respectivamente. La humedad relativa oscila hasta >70%. Utilice un sistema de nebulización para el riego. En promedio, las plantas se riegan 12 veces al día. En otoño y verano, el tiempo de cada riego es de 8 minutos, el intervalo de riego es de 1 hora. Las plantas se cultivaron de manera similar cuatro veces, 2, 4, 6 y 8 semanas después de la siembra, con una solución de micronutrientes (Ghoncheh Co., Irán) a una concentración de 3 ppm y se irrigaron con 100 ml de solución cada vez. La solución nutritiva contiene N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm y oligoelementos Fe, Pb, Zn, Mn, Mo y B.
Se prepararon tres concentraciones de ácido giberélico y el regulador del crecimiento vegetal benciladenina (comprado en Sigma) a 0, 100 y 200 mg/L y se pulverizaron sobre las yemas de las plantas en tres etapas con un intervalo de 15 días17. Se utilizó Tween 20 (0,1%) (comprado en Sigma) en la solución para aumentar su longevidad y tasa de absorción. Temprano en la mañana, rocíe las hormonas sobre los cogollos y las hojas de Liriodendron tulipifera con un pulverizador. Las plantas se rocían con agua destilada.
Altura de la planta, diámetro del tallo, área foliar, contenido de clorofila, número de entrenudos, longitud de ramas secundarias, número de ramas secundarias, volumen de raíces, longitud de raíces, masa de hoja, raíz, tallo y materia fresca seca, contenido de pigmentos fotosintéticos (clorofila a, clorofila b) En diferentes tratamientos se midieron clorofila total, carotenoides, pigmentos totales), azúcares reductores y carbohidratos solubles.
El contenido de clorofila de las hojas jóvenes se midió 180 días después de la aspersión utilizando un medidor de clorofila (Spad CL-01) de 9:30 a 10 am (debido a la frescura de las hojas). Además, el área foliar se midió 180 días después de la aspersión. Pese tres hojas de la parte superior, media e inferior del tallo de cada maceta. Luego, estas hojas se utilizan como plantillas en papel A4 y se recorta el patrón resultante. También se midieron el peso y la superficie de una hoja de papel A4. Luego, el área de las hojas estampadas se calcula utilizando las proporciones. Además, se determinó el volumen de la raíz mediante una probeta graduada. El peso seco de las hojas, el peso seco del tallo, el peso seco de las raíces y el peso seco total de cada muestra se midieron mediante secado en estufa a 72°C durante 48 horas.
El contenido de clorofila y carotenoides se midió mediante el método de Lichtenthaler18. Para ello, se trituraron 0,1 g de hojas frescas en un mortero de porcelana que contenía 15 ml de acetona al 80% y, tras filtrarlas, se midió su densidad óptica mediante un espectrofotómetro a longitudes de onda de 663,2, 646,8 y 470 nm. Calibre el dispositivo con acetona al 80%. Calcule la concentración de pigmentos fotosintéticos utilizando la siguiente ecuación:
Entre ellos, Chl a, Chl b, Chl T y Car representan clorofila a, clorofila b, clorofila total y carotenoides, respectivamente. Los resultados se presentan en mg/ml planta.
Los azúcares reductores se midieron mediante el método de Somogy19. Para ello, se muelen 0,02 g de brotes de plantas en un mortero de porcelana con 10 ml de agua destilada y se vierten en un vaso pequeño. Calienta el vaso hasta que hierva y luego filtra el contenido usando papel de filtro Whatman No. 1 para obtener un extracto de planta. Transfiera 2 ml de cada extracto a un tubo de ensayo y agregue 2 ml de solución de sulfato de cobre. Cubrir el tubo de ensayo con algodón y calentar al baño maría a 100°C durante 20 minutos. En esta etapa, el Cu2+ se convierte en Cu2O mediante la reducción del monosacárido aldehído y se ve un color salmón (terracota) en el fondo del tubo de ensayo. Después de que el tubo de ensayo se haya enfriado, agregue 2 ml de ácido fosfomolíbdico y aparecerá un color azul. Agite el tubo vigorosamente hasta que el color se distribuya uniformemente por todo el tubo. Leer la absorbancia de la solución a 600 nm utilizando un espectrofotómetro.
Calcule la concentración de azúcares reductores utilizando la curva estándar. La concentración de carbohidratos solubles se determinó mediante el método de Fales20. Para ello, se mezclaron 0,1 g de brotes con 2,5 ml de etanol al 80% a 90 °C durante 60 min (dos etapas de 30 min cada una) para extraer los carbohidratos solubles. A continuación se filtra el extracto y se evapora el alcohol. El precipitado resultante se disuelve en 2,5 ml de agua destilada. Vierta 200 ml de cada muestra en un tubo de ensayo y agregue 5 ml de indicador antrona. La mezcla se colocó en un baño de agua a 90°C durante 17 min y, después de enfriar, se determinó su absorbancia a 625 nm.
El experimento fue un experimento factorial basado en un diseño completamente al azar con cuatro repeticiones. El procedimiento PROC UNIVARIATE se utiliza para examinar la normalidad de las distribuciones de datos antes del análisis de varianza. El análisis estadístico comenzó con un análisis estadístico descriptivo para comprender la calidad de los datos brutos recopilados. Los cálculos están diseñados para simplificar y comprimir grandes conjuntos de datos para que sean más fáciles de interpretar. Posteriormente se llevaron a cabo análisis más complejos. La prueba de Duncan se realizó utilizando el software SPSS (versión 24; IBM Corporation, Armonk, NY, EE. UU.) para calcular los cuadrados medios y los errores experimentales para determinar las diferencias entre los conjuntos de datos. Se utilizó la prueba múltiple de Duncan (DMRT) para identificar diferencias entre medias a un nivel de significancia de (0,05 ≤ p). El coeficiente de correlación de Pearson (r) se calculó utilizando el software SPSS (versión 26; IBM Corp., Armonk, NY, EE. UU.) para evaluar la correlación entre diferentes pares de parámetros. Además, se realizó un análisis de regresión lineal utilizando el software SPSS (v.26) para predecir los valores de las variables del primer año en función de los valores de las variables del segundo año. Por otro lado, se realizó un análisis de regresión paso a paso con p <0,01 para identificar los rasgos que influyen críticamente en las hojas de schefflera enana. Se realizó un análisis de ruta para determinar los efectos directos e indirectos de cada atributo en el modelo (basado en las características que mejor explican la variación). Todos los cálculos anteriores (normalidad de la distribución de datos, coeficiente de correlación simple, regresión por pasos y análisis de ruta) se realizaron utilizando el software SPSS V.26.
Las muestras de plantas cultivadas seleccionadas se ajustaron a las directrices institucionales, nacionales e internacionales pertinentes y a la legislación nacional de Irán.
La Tabla 1 muestra estadísticas descriptivas de media, desviación estándar, mínimo, máximo, rango y coeficiente de variación fenotípico (CV) para varios rasgos. Entre estas estadísticas, CV permite la comparación de atributos porque no tiene dimensiones. Los azúcares reductores (40,39%), el peso seco de la raíz (37,32%), el peso fresco de la raíz (37,30%), la proporción de azúcar a azúcar (30,20%) y el volumen de la raíz (30%) son los más altos. y contenido de clorofila (9,88%). ) y el área foliar tienen el índice más alto (11,77%) y el valor de CV más bajo. La Tabla 1 muestra que el peso húmedo total tiene el rango más alto. Sin embargo, este rasgo no tiene el CV más alto. Por lo tanto, se deben utilizar métricas adimensionales como el CV para comparar los cambios de atributos. Un CV alto indica una gran diferencia entre tratamientos para este rasgo. Los resultados de este experimento mostraron grandes diferencias entre los tratamientos bajos en azúcar en el peso seco de las raíces, el peso de las raíces frescas, la proporción de carbohidratos y azúcar y las características del volumen de las raíces.
Los resultados de ANOVA mostraron que, en comparación con el control, la aspersión foliar con ácido giberélico y benciladenina tuvo un efecto significativo sobre la altura de la planta, número de hojas, área foliar, volumen de raíces, longitud de raíces, índice de clorofila, peso fresco y peso seco.
La comparación de los valores medios mostró que los reguladores del crecimiento de las plantas tuvieron un efecto significativo sobre la altura de las plantas y el número de hojas. Los tratamientos más efectivos fueron ácido giberélico a una concentración de 200 mg/l y ácido giberélico + benciladenina a una concentración de 200 mg/l. En comparación con el control, la altura de la planta y el número de hojas aumentaron 32.92 veces y 62.76 veces, respectivamente (Cuadro 2).
El área foliar aumentó significativamente en todas las variantes en comparación con el control, observándose el aumento máximo a 200 mg/l para el ácido giberélico, alcanzando 89,19 cm2. Los resultados mostraron que el área foliar aumentó significativamente al aumentar la concentración del regulador del crecimiento (Tabla 2).
Todos los tratamientos aumentaron significativamente el volumen y la longitud de las raíces en comparación con el control. La combinación de ácido giberélico + benciladenina tuvo el mayor efecto, aumentando el volumen y longitud de la raíz a la mitad en comparación con el control (Cuadro 2).
Los valores más altos de diámetro del tallo y longitud de entrenudos se observaron en los tratamientos control y ácido giberélico + benciladenina 200 mg/l, respectivamente.
El índice de clorofila aumentó en todas las variantes en comparación con el control. El valor más alto de este rasgo se observó cuando se trató con ácido giberélico + benciladenina 200 mg/l, que fue un 30,21% mayor que el control (Tabla 2).
Los resultados mostraron que el tratamiento produjo diferencias significativas en el contenido de pigmentos, reducción de azúcares y carbohidratos solubles.
El tratamiento con ácido giberélico + benciladenina dio como resultado el contenido máximo de pigmentos fotosintéticos. Este signo fue significativamente mayor en todas las variantes que en el control.
Los resultados mostraron que todos los tratamientos podrían aumentar el contenido de clorofila de Schefflera enana. Sin embargo, el valor más alto de este rasgo se observó en el tratamiento con ácido giberélico + benciladenina, el cual fue 36.95% mayor que el control (Cuadro 3).
Los resultados para la clorofila b fueron completamente similares a los resultados para la clorofila a, la única diferencia fue el aumento en el contenido de clorofila b, que fue 67,15% mayor que en el control (Cuadro 3).
El tratamiento resultó en un aumento significativo de la clorofila total en comparación con el control. El tratamiento con ácido giberélico 200 mg/l + benciladenina 100 mg/l condujo al valor más alto de este rasgo, que fue un 50% mayor que el control (Tabla 3). Según los resultados, el control y el tratamiento con benciladenina a dosis de 100 mg/l condujeron a las tasas más altas de este rasgo. Liriodendron tulipifera tiene el valor más alto de carotenoides (Tabla 3).
Los resultados mostraron que cuando se trató con ácido giberélico a una concentración de 200 mg/L, el contenido de clorofila a aumentó significativamente a clorofila b (Fig. 1).
Efecto del ácido giberélico y la benciladenina sobre a/b Ch. Proporciones de schefflera enana. (GA3: ácido giberélico y BA: benciladenina). Las mismas letras en cada figura indican que la diferencia no es significativa (P <0,01).
El efecto de cada tratamiento sobre el peso fresco y seco de la madera de schefflera enana fue significativamente mayor que el del control. El ácido giberélico + benciladenina a 200 mg/L fue el tratamiento más efectivo, aumentando el peso fresco en un 138,45% respecto al control. En comparación con el control, todos los tratamientos excepto 100 mg/L de benciladenina aumentaron significativamente el peso seco de la planta, y 200 mg/L de ácido giberélico + benciladenina dieron como resultado el valor más alto para este rasgo (Tabla 4).
La mayoría de las variantes se diferenciaron significativamente del control en este aspecto, siendo los valores más altos 100 y 200 mg/l de benciladenina y 200 mg/l de ácido giberélico + benciladenina (Fig. 2).
La influencia del ácido giberélico y la benciladenina en la proporción de carbohidratos solubles y azúcares reductores en schefflera enana. (GA3: ácido giberélico y BA: benciladenina). Las mismas letras en cada figura no indican diferencias significativas (P <0,01).
Se realizó un análisis de regresión paso a paso para determinar los atributos reales y comprender mejor la relación entre las variables independientes y el número de hojas en Liriodendron tulipifera. El volumen de raíces fue la primera variable ingresada en el modelo, explicando el 44% de la variación. La siguiente variable fue el peso de raíces frescas, y estas dos variables explicaron el 63% de la variación en el número de hojas (Cuadro 5).
Se realizó un análisis de ruta para interpretar mejor la regresión por pasos (Tabla 6 y Figura 3). El mayor efecto positivo sobre el número de hojas se asoció con la masa de raíces frescas (0,43), que se correlacionó positivamente con el número de hojas (0,47). Esto indica que este rasgo afecta directamente el rendimiento, mientras que su efecto indirecto a través de otros rasgos es insignificante, y que este rasgo puede usarse como criterio de selección en programas de mejoramiento de schefflera enana. El efecto directo del volumen radicular fue negativo (−0,67). La influencia de esta característica sobre el número de hojas es directa, la influencia indirecta es insignificante. Esto indica que cuanto mayor es el volumen de raíces, menor es el número de hojas.
La Figura 4 muestra los cambios en la regresión lineal del volumen de raíces y azúcares reductores. Según el coeficiente de regresión, cada unidad de cambio en la longitud de la raíz y los carbohidratos solubles significa que el volumen de la raíz y los azúcares reductores cambian en 0,6019 y 0,311 unidades.
El coeficiente de correlación de Pearson de los rasgos de crecimiento se muestra en la Figura 5. Los resultados mostraron que el número de hojas y la altura de la planta (0,379*) tuvieron la correlación positiva y la significación más altas.
Mapa de calor de relaciones entre variables en coeficientes de correlación de la tasa de crecimiento. # Eje Y: 1-Indice Ch., 2-Entrenudo, 3-LAI, 4-N de hojas, 5-Altura de patas, 6-Diámetro del tallo. # A lo largo del eje X: A – índice H., B – distancia entre nudos, C – LAY, D – N. de la hoja, E – altura de la pernera, F – diámetro del tallo.
El coeficiente de correlación de Pearson para los atributos relacionados con el peso húmedo se muestra en la Figura 6. Los resultados muestran la relación entre el peso húmedo de las hojas y el peso seco aéreo (0,834**), el peso seco total (0,913**) y el peso seco de las raíces (0,562* ). . La masa seca total tiene la correlación positiva más alta y significativa con la masa seca de brotes (0,790**) y la masa seca de raíces (0,741**).
Mapa de calor de relaciones entre variables de coeficientes de correlación de peso fresco. # Eje Y: 1 – peso de hojas frescas, 2 – peso de cogollos frescos, 3 – peso de raíces frescas, 4 – peso total de hojas frescas. # El eje X representa: A – peso de hojas frescas, B – peso de yemas frescas, CW – peso de raíces frescas, D – peso fresco total.
Los coeficientes de correlación de Pearson para los atributos relacionados con el peso seco se muestran en la Figura 7. Los resultados muestran que el peso seco de las hojas, el peso seco de las yemas (0,848**) y el peso seco total (0,947**), el peso seco de las yemas (0,854**) y la masa seca total (0,781**) tienen los valores más altos. correlación positiva y correlación significativa.
Mapa de calor de relaciones entre variables de coeficientes de correlación de peso seco. # El eje Y representa: peso seco de 1 hoja, peso seco de 2 yemas, peso seco de 3 raíces, peso seco total de 4. # Eje X: Peso seco de hoja A, Peso seco de yema B, Peso seco de raíz CW, Peso seco total D.
El coeficiente de correlación de Pearson de las propiedades de los pigmentos se muestra en la Figura 8. Los resultados muestran que la clorofila a y la clorofila b (0,716**), la clorofila total (0,968**) y los pigmentos totales (0,954**); clorofila by clorofila total (0,868**) y pigmentos totales (0,851**); la clorofila total tiene la correlación positiva y significativa más alta con los pigmentos totales (0,984**).
Mapa de calor de relaciones entre variables del coeficiente de correlación de clorofila. # Ejes Y: 1- Canal a, 2- Canal. b,3 – relación a/b, 4 canales. Total, 5 carotenoides, 6 pigmentos de rendimiento. # Ejes X: A-Ch. aB-Cap. b,C- relación a/b, D-Ch. Contenido total, E-carotenoides, F-rendimiento de pigmentos.
La Schefflera enana es una planta de interior popular en todo el mundo y su crecimiento y desarrollo está recibiendo mucha atención actualmente. El uso de reguladores del crecimiento de las plantas resultó en diferencias significativas, ya que todos los tratamientos aumentaron la altura de las plantas en comparación con el control. Aunque la altura de las plantas generalmente se controla genéticamente, las investigaciones muestran que la aplicación de reguladores del crecimiento de las plantas puede aumentar o disminuir la altura de las plantas. La altura de la planta y el número de hojas tratadas con ácido giberélico + benciladenina 200 mg/L fueron los mayores, alcanzando 109 cm y 38,25, respectivamente. De acuerdo con estudios previos (SalehiSardoei et al.52) y Spathiphyllum23, se observaron aumentos similares en la altura de las plantas debido al tratamiento con ácido giberélico en caléndulas en macetas, albus alba21, azucenas22, azucenas, madera de agar y lirios de la paz.
El ácido giberélico (GA) juega un papel importante en diversos procesos fisiológicos de las plantas. Estimulan la división celular, el alargamiento celular, el alargamiento del tallo y el aumento de tamaño24. GA induce la división celular y el alargamiento en los ápices y meristemas de los brotes25. Los cambios en las hojas también incluyen una disminución del grosor del tallo, un tamaño de hoja más pequeño y un color verde más brillante26. Estudios que utilizan factores inhibidores o estimuladores han demostrado que los iones de calcio de fuentes internas actúan como segundos mensajeros en la vía de señalización de giberelina en la corola de sorgo27. El HA aumenta la longitud de la planta estimulando la síntesis de enzimas que provocan la relajación de la pared celular, como XET o XTH, expansinas y PME28. Esto hace que las células se agranden a medida que la pared celular se relaja y el agua ingresa a la célula29. La aplicación de GA7, GA3 y GA4 puede aumentar el alargamiento del tallo30,31. El ácido giberélico provoca el alargamiento del tallo en plantas enanas y en plantas en roseta retarda el crecimiento de las hojas y el alargamiento de los entrenudos32. Sin embargo, antes de la etapa reproductiva, la longitud del tallo aumenta de 4 a 5 veces su altura original33. El proceso de biosíntesis de GA en plantas se resume en la Figura 9.
Biosíntesis de GA en plantas y niveles de GA bioactivo endógeno, representación esquemática de plantas (derecha) y biosíntesis de GA (izquierda). Las flechas están codificadas por colores para corresponder a la forma de HA indicada a lo largo de la vía biosintética; Las flechas rojas indican niveles disminuidos de GC debido a la localización en órganos de la planta, y las flechas negras indican niveles aumentados de GC. En muchas plantas, como el arroz y la sandía, el contenido de GA es mayor en la base o parte inferior de la hoja30. Además, algunos informes indican que el contenido de GA bioactivo disminuye a medida que las hojas se alargan desde la base34. Se desconocen los niveles exactos de giberelinas en estos casos.
Los reguladores del crecimiento de las plantas también influyen significativamente en el número y área de las hojas. Los resultados mostraron que el aumento de la concentración del regulador del crecimiento de las plantas dio como resultado un aumento significativo en el área y el número de hojas. Se ha informado que la benciladenina aumenta la producción de hojas de cala15. Según los resultados de este estudio, todos los tratamientos mejoraron el área y el número de hojas. El ácido giberélico + benciladenina fue el tratamiento más efectivo y resultó en el mayor número y área de hojas. Cuando se cultiva schefflera enana en interiores, puede haber un aumento notable en la cantidad de hojas.
El tratamiento con GA3 aumentó la longitud de los entrenudos en comparación con la benciladenina (BA) o ningún tratamiento hormonal. Este resultado es lógico dado el papel de AG en la promoción del crecimiento7. El crecimiento del tallo también mostró resultados similares. El ácido giberélico aumentó la longitud del tallo pero disminuyó su diámetro. Sin embargo, la aplicación combinada de BA y GA3 aumentó significativamente la longitud del tallo. Este aumento fue mayor en comparación con las plantas tratadas con BA o sin la hormona. Aunque el ácido giberélico y las citoquininas (CK) generalmente promueven el crecimiento de las plantas, en algunos casos tienen efectos opuestos en diferentes procesos35. Por ejemplo, se observó una interacción negativa en el aumento de la longitud del hipocótilo en plantas tratadas con GA y BA36. Por otro lado, BA aumentó significativamente el volumen radicular (Cuadro 1). En muchas plantas (por ejemplo, especies de Dendrobium y orquídeas) se ha informado un aumento del volumen de raíces debido a BA exógeno37,38.
Todos los tratamientos hormonales aumentaron el número de hojas nuevas. Es comercialmente deseable el aumento natural del área foliar y la longitud del tallo mediante tratamientos combinados. La cantidad de hojas nuevas es un indicador importante del crecimiento vegetativo. El uso de hormonas exógenas no se ha utilizado en la producción comercial de Liriodendron tulipifera. Sin embargo, los efectos promotores del crecimiento de GA y CK, aplicados en equilibrio, pueden proporcionar nuevos conocimientos para mejorar el cultivo de esta planta. En particular, el efecto sinérgico del tratamiento con BA + GA3 fue mayor que el de GA o BA administrados solos. El ácido giberélico aumenta el número de hojas nuevas. A medida que se desarrollan hojas nuevas, aumentar el número de hojas nuevas puede limitar el crecimiento de las hojas39. Se ha informado que el GA mejora el transporte de sacarosa desde los sumideros hasta los órganos fuente40,41. Además, la aplicación exógena de GA a plantas perennes puede promover el crecimiento de órganos vegetativos como hojas y raíces, evitando así la transición del crecimiento vegetativo al crecimiento reproductivo42.
El efecto de la AG sobre el aumento de la materia seca de las plantas puede explicarse por un aumento en la fotosíntesis debido a un aumento en el área foliar43. Se informó que el GA causa un aumento en el área foliar del maíz34. Los resultados mostraron que aumentar la concentración de BA a 200 mg/L podría aumentar la longitud y el número de ramas secundarias y el volumen de las raíces. El ácido giberélico influye en los procesos celulares, como la estimulación de la división y el alargamiento celular, mejorando así el crecimiento vegetativo43. Además, el HA expande la pared celular al hidrolizar el almidón en azúcar, lo que reduce el potencial hídrico de la célula, lo que hace que entre agua en la célula y, en última instancia, conduce al alargamiento de la célula44.
Hora de publicación: 11 de junio de 2024