Este estudio demuestra que el hongo asociado a la raíz Kosakonia oryziphila NP19, aislado de raíces de arroz, es un biopesticida promotor del crecimiento vegetal prometedor y un agente bioquímico para el control del añublo del arroz. Se realizaron experimentos in vitro en hojas frescas de plántulas de arroz aromático Khao Dawk Mali 105 (KDML105). Los resultados mostraron que NP19 inhibió eficazmente la germinación de los conidios del hongo del añublo del arroz. La infección fúngica se inhibió bajo tres condiciones de tratamiento diferentes: inoculación del arroz con NP19 y conidios fúngicos; inoculación simultánea de las hojas con NP19 y conidios fúngicos; e inoculación de las hojas con conidios fúngicos seguida de tratamiento con NP19 30 h después. Además, NP19 redujo el crecimiento de las hifas fúngicas entre un 9,9 % y un 53,4 %. En experimentos en macetas, NP19 aumentó las actividades de peroxidasa (POD) y superóxido dismutasa (SOD) en un 6,1% a 63,0% y en un 3,0% a 67,7%, respectivamente, lo que indica mecanismos de defensa mejorados de la planta. En comparación con los controles NP19 no infectados, las plantas de arroz infectadas con NP19 mostraron un aumento en el contenido de pigmento en un 0,3%–24,7%, el número de granos completos por panícula en un 4,1%, el rendimiento de granos completos en un 26,3%, el índice de masa de rendimiento del rendimiento en un 34,4% y el contenido del compuesto aromático 2-acetil-1-pirrolina (2AP) en un 10,1%. En plantas de arroz infectadas tanto con NP19 como con añublo, los aumentos fueron de 0,2%–49,2%, 4,6%, 9,1%, 54,4% y 7,5%, respectivamente. Experimentos de campo mostraron que las plantas de arroz colonizadas o inoculadas con NP19 mostraron un aumento del 15,1-27,2% en el número de granos completos por panícula, del 103,6-119,8% en el rendimiento de grano completo y del 18,0-35,8% en el contenido de 2AP. Estas plantas de arroz también mostraron una mayor actividad de SOD (6,9-29,5%) en comparación con las plantas de arroz infectadas con el añublo no inoculadas con NP19. La aplicación foliar de NP19 tras la infección ralentizó la progresión de las lesiones. Por lo tanto, se demostró que NP19 de K. oryziphila es un bioagente y biopesticida promotor del crecimiento vegetal para el control del añublo del arroz.
Sin embargo, la eficacia de los fungicidas se ve influenciada por numerosos factores, como la formulación, el momento y el método de aplicación, la gravedad de la enfermedad, la eficacia de los sistemas de pronóstico de enfermedades y la aparición de cepas resistentes a los fungicidas. Además, el uso de fungicidas químicos puede causar toxicidad residual en el medio ambiente y representar un riesgo para la salud de los usuarios.
En el experimento en macetas, las semillas de arroz se esterilizaron superficialmente y germinaron como se describió anteriormente. Posteriormente, se sembraron con K. oryziphila NP19 y se trasplantaron a bandejas de semillero. Las plántulas se incubaron durante 30 días para permitir la emergencia de las plántulas de arroz. Posteriormente, se trasplantaron a macetas. Durante el proceso de trasplante, se fertilizaron las plantas de arroz para prepararlas contra la infección por el hongo causante del tizón del arroz y para comprobar su resistencia.
En un experimento de campo, las semillas germinadas infectadas con Aspergillus oryzae NP19 se trataron mediante el método descrito anteriormente y se dividieron en dos grupos: semillas infectadas con Aspergillus oryzae NP19 (RS) y semillas no infectadas (US). Las semillas germinadas se sembraron en bandejas con tierra esterilizada (una mezcla de tierra, cascarilla de arroz quemada y estiércol en una proporción de 7:2:1 en peso) y se incubaron durante 30 días.
Se añadió una suspensión de conidios de K. oryziphila al arroz R y, tras 30 h de incubación, se añadieron 2 μl de K. oryziphila NP19 en el mismo punto. Todas las placas de Petri se incubaron a 25 °C en oscuridad durante 30 horas y, posteriormente, bajo iluminación continua. Cada grupo se replicó tres veces. Tras 72 horas de incubación, se examinaron secciones de la planta y se sometieron a microscopía electrónica de barrido. Brevemente, las secciones de la planta se fijaron en solución salina tamponada con fosfato que contenía glutaraldehído al 2,5 % (v/v) y se deshidrataron en una serie de soluciones de etanol. Las muestras se secaron hasta el punto crítico con dióxido de carbono, se recubrieron con oro y se observaron al microscopio electrónico de barrido durante 15 minutos.
Hora de publicación: 13 de octubre de 2025