Este estudio demuestra que el hongo Kosakonia oryziphila NP19, asociado a las raíces y aislado de ellas, es un prometedor biopesticida promotor del crecimiento vegetal y agente bioquímico para el control de la piriculariosis del arroz. Se realizaron experimentos in vitro con hojas frescas de plántulas de arroz aromático Khao Dawk Mali 105 (KDML105). Los resultados mostraron que NP19 inhibió eficazmente la germinación de las conidias del hongo causante de la piriculariosis. La infección fúngica se inhibió bajo tres condiciones de tratamiento diferentes: inoculación del arroz con NP19 y conidias; inoculación simultánea de las hojas con NP19 y conidias; e inoculación de las hojas con conidias seguida de un tratamiento con NP19 30 horas después. Además, NP19 redujo el crecimiento de las hifas del hongo entre un 9,9 % y un 53,4 %. En experimentos en macetas, NP19 aumentó las actividades de peroxidasa (POD) y superóxido dismutasa (SOD) en 6,1% a 63,0% y 3,0% a 67,7%, respectivamente, lo que indica mecanismos de defensa de la planta mejorados. En comparación con los controles NP19 no infectados, las plantas de arroz infectadas con NP19 mostraron un aumento en el contenido de pigmento en 0,3%–24,7%, el número de granos completos por panícula en 4,1%, el rendimiento de granos completos en 26,3%, el índice de masa de rendimiento en 34,4% y el contenido del compuesto aromático 2-acetil-1-pirrolina (2AP) en 10,1%. En plantas de arroz infectadas tanto con NP19 como con piriculariosis, los aumentos fueron 0,2%–49,2%, 4,6%, 9,1%, 54,4% y 7,5%, respectivamente. Los experimentos de campo demostraron que las plantas de arroz colonizadas y/o inoculadas con NP19 presentaron un aumento del 15,1 al 27,2 % en el número de granos completos por panícula, del 103,6 al 119,8 % en el rendimiento de grano completo y del 18,0 al 35,8 % en el contenido de 2AP. Estas plantas de arroz también mostraron una mayor actividad de SOD (6,9-29,5 %) en comparación con las plantas de arroz infectadas con piriculariosis no inoculadas con NP19. La aplicación foliar de NP19 después de la infección ralentizó la progresión de las lesiones. Por lo tanto, se demostró que K. oryziphila NP19 es un potencial agente biológico promotor del crecimiento vegetal y biopesticida para el control de la piriculariosis del arroz.
Sin embargo, la eficacia de los fungicidas se ve influenciada por muchos factores, como la formulación, el momento y el método de aplicación, la gravedad de la enfermedad, la eficacia de los sistemas de predicción de enfermedades y la aparición de cepas resistentes a los fungicidas. Además, el uso de fungicidas químicos puede causar toxicidad residual en el medio ambiente y suponer un riesgo para la salud de los usuarios.
En el experimento en macetas, las semillas de arroz se esterilizaron superficialmente y se germinaron como se describió anteriormente. Luego se sembraron con K. oryziphila NP19 y se trasplantaron a bandejas de semillero. Las plántulas se incubaron durante 30 días para permitir su emergencia. Posteriormente, se trasplantaron a macetas. Durante el proceso de trasplante, las plantas de arroz se fertilizaron para prepararlas para la infección con el hongo causante de la piriculariosis del arroz y para evaluar su resistencia.
En un experimento de campo, las semillas germinadas infectadas con Aspergillus oryzae NP19 fueron tratadas con el método descrito anteriormente y divididas en dos grupos: semillas infectadas con Aspergillus oryzae NP19 (RS) y semillas no infectadas (US). Las semillas germinadas se plantaron en bandejas con tierra esterilizada (una mezcla de tierra, cáscara de arroz quemada y estiércol en una proporción de 7:2:1 en peso) y se incubaron durante 30 días.
Se añadió una suspensión de conidios de oryziphila al arroz R y, tras 30 h de incubación, se añadieron 2 μl de K. oryziphila NP19 en el mismo lugar. Todas las placas de Petri se incubaron a 25 °C en la oscuridad durante 30 horas y posteriormente se incubaron bajo iluminación continua. Cada grupo se replicó tres veces. Tras 72 horas de incubación, se examinaron secciones de plantas y se sometieron a microscopía electrónica de barrido. Brevemente, las secciones de plantas se fijaron en solución salina tamponada con fosfato que contenía glutaraldehído al 2,5 % (v/v) y se deshidrataron en una serie de soluciones de etanol. Las muestras se secaron por punto crítico con dióxido de carbono, se recubrieron con oro y se observaron bajo un microscopio electrónico de barrido durante 15 minutos.
Hora de publicación: 13 de octubre de 2025