El uso generalizado de pesticidas sintéticos ha provocado muchos problemas, incluida la aparición de organismos resistentes, la degradación ambiental y daños a la salud humana. Por lo tanto, nuevos microbiospesticidasSe necesitan con urgencia soluciones que sean seguras para la salud humana y el medio ambiente. En este estudio, se utilizó un biosurfactante ramnolípido producido por Enterobacter cloacae SJ2 para evaluar la toxicidad para las larvas de mosquitos (Culex quinquefasciatus) y termitas (Odontotermes obesus). Los resultados mostraron que había una tasa de mortalidad dependiente de la dosis entre tratamientos. El valor CL50 (concentración letal del 50%) a las 48 horas para biosurfactantes de larvas de termitas y mosquitos se determinó utilizando un método de ajuste de curvas de regresión no lineal. Los resultados mostraron que los valores CL50 de 48 horas (intervalo de confianza del 95%) de actividad larvicida y antitermitas del biosurfactante fueron 26,49 mg/L (rango 25,40 a 27,57) y 33,43 mg/L (rango 31,09 a 35,68) respectivamente. Según el examen histopatológico, el tratamiento con biosurfactantes provocó graves daños en los tejidos orgánulos de larvas y termitas. Los resultados de este estudio indican que el biosurfactante microbiano producido por Enterobacter cloacae SJ2 es una herramienta excelente y potencialmente eficaz para el control de Cx. quinquefasciatus y O. obesus.
Los países tropicales padecen un gran número de enfermedades transmitidas por mosquitos1. La relevancia de las enfermedades transmitidas por mosquitos es generalizada. Más de 400.000 personas mueren a causa de la malaria cada año, y algunas ciudades importantes están experimentando epidemias de enfermedades graves como el dengue, la fiebre amarilla, el chikungunya y el Zika.2 Las enfermedades transmitidas por vectores están asociadas con una de cada seis infecciones en todo el mundo, siendo los mosquitos los causantes de la mayor parte de las infecciones. casos significativos3,4. Culex, Anopheles y Aedes son los tres géneros de mosquitos más comúnmente asociados con la transmisión de enfermedades5. La prevalencia del dengue, una infección transmitida por el mosquito Aedes aegypti, ha aumentado durante la última década y representa una importante amenaza para la salud pública4,7,8. Según la Organización Mundial de la Salud (OMS), más del 40% de la población mundial está en riesgo de contraer dengue, y anualmente se producen entre 50 y 100 millones de casos nuevos en más de 100 países9,10,11. El dengue se ha convertido en un importante problema de salud pública a medida que su incidencia ha aumentado en todo el mundo12,13,14. Anopheles gambiae, comúnmente conocido como mosquito Anopheles africano, es el vector más importante de la malaria humana en las regiones tropicales y subtropicales15. El virus del Nilo Occidental, la encefalitis de San Luis, la encefalitis japonesa y las infecciones virales de caballos y aves son transmitidas por mosquitos Culex, a menudo llamados mosquitos domésticos comunes. Además, también son portadores de enfermedades bacterianas y parasitarias16. Hay más de 3.000 especies de termitas en el mundo y existen desde hace más de 150 millones de años17. La mayoría de las plagas viven en el suelo y se alimentan de madera y productos de madera que contienen celulosa. La termita india Odontotermes obesus es una plaga importante que causa graves daños a importantes cultivos y árboles de plantación18. En las zonas agrícolas, las infestaciones de termitas en diversas etapas pueden causar enormes daños económicos a diversos cultivos, especies de árboles y materiales de construcción. Las termitas también pueden causar problemas de salud humana19.
La cuestión de la resistencia de microorganismos y plagas en los campos farmacéutico y agrícola actual es compleja20,21. Por lo tanto, ambas empresas deberían buscar nuevos antimicrobianos rentables y biopesticidas seguros. Actualmente se dispone de pesticidas sintéticos que han demostrado ser infecciosos y repeler insectos beneficiosos no objetivo22. En los últimos años, la investigación sobre biosurfactantes se ha ampliado debido a su aplicación en diversas industrias. Los biosurfactantes son muy útiles y vitales en la agricultura, la remediación de suelos, la extracción de petróleo, la eliminación de bacterias e insectos y el procesamiento de alimentos23,24. Los biosurfactantes o tensioactivos microbianos son productos químicos biosurfactantes producidos por microorganismos como bacterias, levaduras y hongos en hábitats costeros y áreas contaminadas con petróleo25,26. Los tensioactivos y biosurfactantes de origen químico son dos tipos que se obtienen directamente del entorno natural27. Varios biosurfactantes se obtienen de hábitats marinos28,29. Por ello, los científicos buscan nuevas tecnologías para la producción de biosurfactantes basados en bacterias naturales30,31. Los avances en este tipo de investigaciones demuestran la importancia de estos compuestos biológicos para la protección del medio ambiente32. Bacillus, Pseudomonas, Rhodococcus, Alcaligenes, Corynebacterium y estos géneros bacterianos son representantes bien estudiados23,33.
Existen muchos tipos de biosurfactantes con una amplia gama de aplicaciones34. Una ventaja significativa de estos compuestos es que algunos de ellos tienen actividad antibacteriana, larvicida e insecticida. Esto significa que pueden utilizarse en la industria agrícola, química, farmacéutica y cosmética35,36,37,38. Debido a que los biosurfactantes son generalmente biodegradables y beneficiosos para el medio ambiente, se utilizan en programas de manejo integrado de plagas para proteger los cultivos39. Así, se han obtenido conocimientos básicos sobre la actividad larvicida y antitermitas de los biosurfactantes microbianos producidos por Enterobacter cloacae SJ2. Examinamos la mortalidad y los cambios histológicos cuando se expusieron a diferentes concentraciones de biosurfactantes ramnolípidos. Además, evaluamos el programa informático Estructura-Actividad Cuantitativa (QSAR) ampliamente utilizado Estructura-Actividad Ecológica (ECOSAR) para determinar la toxicidad aguda de microalgas, dafnias y peces.
En este estudio, se evaluó la actividad antitermitas (toxicidad) de biosurfactantes purificados en diversas concentraciones que oscilan entre 30 y 50 mg/ml (a intervalos de 5 mg/ml) contra termitas indias, O. obesus y la cuarta especie. Larvas del estadio Cx. Larvas de mosquitos quinquefasciatus. Concentraciones de biosurfactante CL50 durante 48 horas contra O. obesus y Cx. C. solanacearum. Las larvas de mosquito se identificaron mediante un método de ajuste de curvas de regresión no lineal. Los resultados mostraron que la mortalidad de las termitas aumentó al aumentar la concentración de biosurfactante. Los resultados mostraron que el biosurfactante tuvo actividad larvicida (Figura 1) y actividad antitermitas (Figura 2), con valores de CL50 de 48 horas (IC 95%) de 26,49 mg/L (25,40 a 27,57) y 33,43 mg/L. l (Fig. 31.09 a 35.68), respectivamente (Tabla 1). En términos de toxicidad aguda (48 horas), el biosurfactante se clasifica como "nocivo" para los organismos probados. El biosurfactante producido en este estudio mostró una excelente actividad larvicida con un 100% de mortalidad dentro de las 24 a 48 horas posteriores a la exposición.
Calcule el valor LC50 para la actividad larvicida. Ajuste de curvas de regresión no lineal (línea continua) e intervalo de confianza del 95% (área sombreada) para la mortalidad relativa (%).
Calcule el valor LC50 para la actividad anti-termitas. Ajuste de curvas de regresión no lineal (línea continua) e intervalo de confianza del 95% (área sombreada) para la mortalidad relativa (%).
Al final del experimento, se observaron bajo el microscopio cambios morfológicos y anomalías. Se observaron cambios morfológicos en los grupos control y tratado con un aumento de 40x. Como se muestra en la Figura 3, se produjo un deterioro del crecimiento en la mayoría de las larvas tratadas con biosurfactantes. La Figura 3a muestra una Cx normal. quinquefasciatus, la Figura 3b muestra una Cx anómala. Provoca cinco larvas de nematodos.
Efecto de dosis subletales (CL50) de biosurfactantes sobre el desarrollo de larvas de Culex quinquefasciatus. Imagen de microscopía óptica (a) de un Cx normal con un aumento de 40 ×. quinquefasciatus (b) Cx anormal. Provoca cinco larvas de nematodos.
En el presente estudio, el examen histológico de las larvas tratadas (Fig. 4) y las termitas (Fig. 5) reveló varias anomalías, incluida la reducción del área abdominal y daño a los músculos, las capas epiteliales y la piel. intestino medio. La histología reveló el mecanismo de actividad inhibidora del biosurfactante utilizado en este estudio.
Histopatología de larvas Cx de cuarto estadio normales no tratadas. quinquefasciatus (control: (a,b)) y tratadas con biosurfactante (tratamiento: (c,d)). Las flechas indican el epitelio intestinal tratado (epi), los núcleos (n) y los músculos (mu). Barra = 50 µm.
Histopatología de O. obesus normal no tratado (control: (a,b)) y tratado con biosurfactante (tratamiento: (c,d)). Las flechas indican epitelio intestinal (epi) y músculo (mu), respectivamente. Barra = 50 µm.
En este estudio, se utilizó ECOSAR para predecir la toxicidad aguda de los productos biosurfactantes ramnolípidos para los productores primarios (algas verdes), consumidores primarios (pulgas de agua) y consumidores secundarios (peces). Este programa utiliza sofisticados modelos cuantitativos de compuestos de estructura-actividad para evaluar la toxicidad basándose en la estructura molecular. El modelo utiliza software de estructura-actividad (SAR) para calcular la toxicidad aguda y a largo plazo de sustancias para las especies acuáticas. Específicamente, la Tabla 2 resume las concentraciones letales medias estimadas (CL50) y las concentraciones efectivas medias (CE50) para varias especies. La toxicidad sospechada se clasificó en cuatro niveles utilizando el Sistema Globalmente Armonizado de Clasificación y Etiquetado de Productos Químicos (Tabla 3).
Control de enfermedades transmitidas por vectores, especialmente cepas de mosquitos y mosquitos Aedes. Egipcios, ahora trabajo difícil 40,41,42,43,44,45,46. Aunque algunos pesticidas químicamente disponibles, como los piretroides y los organofosforados, son algo beneficiosos, plantean riesgos importantes para la salud humana, como diabetes, trastornos reproductivos, trastornos neurológicos, cáncer y enfermedades respiratorias. Además, con el tiempo, estos insectos pueden volverse resistentes a ellos13,43,48. Por lo tanto, las medidas de control biológico eficaces y respetuosas con el medio ambiente se convertirán en un método más popular de control de mosquitos49,50. Benelli51 sugirió que el control temprano de los mosquitos vectores sería más efectivo en las zonas urbanas, pero no recomendaron el uso de larvicidas en las zonas rurales52. Tom et al 53 también sugirieron que controlar los mosquitos en sus etapas inmaduras sería una estrategia sencilla y segura porque son más sensibles a los agentes de control 54 .
La producción de biosurfactante mediante una cepa potente (Enterobacter cloacae SJ2) mostró una eficacia constante y prometedora. Nuestro estudio anterior informó que Enterobacter cloacae SJ2 optimiza la producción de biosurfactantes utilizando parámetros fisicoquímicos26. Según su estudio, las condiciones óptimas para la producción de biosurfactante por parte de un potencial aislado de E. cloacae fueron incubación durante 36 horas, agitación a 150 rpm, pH 7,5, 37 °C, salinidad 1 ppt, 2 % de glucosa como fuente de carbono, 1 % de levadura. . el extracto se utilizó como fuente de nitrógeno para obtener 2,61 g/L de biosurfactante. Además, los biosurfactantes se caracterizaron mediante TLC, FTIR y MALDI-TOF-MS. Esto confirmó que el ramnolípido es un biosurfactante. Los biosurfactantes glicolípidos son la clase más estudiada de otros tipos de biosurfactantes55. Están formados por partes de carbohidratos y lípidos, principalmente cadenas de ácidos grasos. Entre los glicolípidos, los principales representantes son los ramnolípidos y los soforolípidos56. Los ramnolípidos contienen dos restos de ramnosa unidos al ácido mono o di-β-hidroxidecanoico 57 . El uso de ramnolípidos en las industrias médica y farmacéutica está bien establecido 58 , además de su reciente uso como pesticidas 59 .
La interacción del biosurfactante con la región hidrofóbica del sifón respiratorio permite que el agua pase a través de su cavidad estomática, aumentando así el contacto de las larvas con el medio acuático. La presencia de biosurfactantes también afecta a la tráquea, cuya longitud está cerca de la superficie, lo que facilita que las larvas se arrastren hasta la superficie y respiren. Como resultado, la tensión superficial del agua disminuye. Como las larvas no pueden adherirse a la superficie del agua, caen al fondo del tanque, alterando la presión hidrostática, lo que provoca un gasto energético excesivo y la muerte por ahogamiento38,60. Ghribi61 obtuvo resultados similares, donde un biosurfactante producido por Bacillus subtilis exhibió actividad larvicida contra Ephestia kuehniella. De manera similar, la actividad larvicida de Cx. Das y Mukherjee23 también evaluaron el efecto de los lipopéptidos cíclicos en larvas de quinquefasciatus.
Los resultados de este estudio se refieren a la actividad larvicida de los biosurfactantes ramnolípidos contra Cx. La matanza de mosquitos quinquefasciatus es consistente con resultados publicados anteriormente. Por ejemplo, se utilizan biosurfactantes a base de surfactina producidos por diversas bacterias del género Bacillus. y Pseudomonas spp. Algunos informes iniciales64,65,66 informaron sobre la actividad de los biosurfactantes lipopeptídicos de Bacillus subtilis23 para matar larvas. Deepali et al. 63 encontraron que el biosurfactante ramnolípido aislado de Stenotropomonas maltophilia tenía una potente actividad larvicida a una concentración de 10 mg/L. Silva et al. 67 informaron la actividad larvicida del biosurfactante ramnolípido contra Ae en una concentración de 1 g/L. Aedes aegypti. Kanakdande et al. 68 informaron que los biosurfactantes lipopéptidos producidos por Bacillus subtilis causaron mortalidad general en larvas de Culex y termitas con la fracción lipófila de Eucalyptus. De manera similar, Masendra et al. 69 informaron una mortalidad de hormigas obreras (Cryptotermes cynocephalus Light.) del 61,7 % en las fracciones lipófilas de n -hexano y EtOAc del extracto crudo de E..
Parthipan et al 70 informaron el uso insecticida de biosurfactantes lipopéptidos producidos por Bacillus subtilis A1 y Pseudomonas stutzeri NA3 contra Anopheles Stephensi, un vector del parásito de la malaria Plasmodium. Observaron que las larvas y pupas sobrevivían más tiempo, tenían períodos de oviposición más cortos, eran estériles y tenían una vida útil más corta cuando se trataban con diferentes concentraciones de biosurfactantes. Los valores de LC50 observados del biosurfactante A1 de B. subtilis fueron 3,58, 4,92, 5,37, 7,10 y 7,99 mg/l para diferentes estados larvarios (es decir, larvas I, II, III, IV y estadio de pupa), respectivamente. En comparación, los biosurfactantes para los estadios larvarios I-IV y pupales de Pseudomonas stutzeri NA3 fueron 2,61, 3,68, 4,48, 5,55 y 6,99 mg/l, respectivamente. Se cree que el retraso en la fenología de las larvas y pupas supervivientes es el resultado de importantes alteraciones fisiológicas y metabólicas causadas por los tratamientos con insecticidas71.
La cepa CCMA 0358 de Wickerhamomyces anomalus produce un biosurfactante con actividad larvicida 100% contra los mosquitos Aedes. aegypti el intervalo de 24 horas 38 fue mayor que el informado por Silva et al. Se ha demostrado que un biosurfactante producido a partir de Pseudomonas aeruginosa utilizando aceite de girasol como fuente de carbono mata el 100% de las larvas en 48 horas 67 . Abinaya et al.72 y Pradhan et al.73 también demostraron los efectos larvicidas o insecticidas de los surfactantes producidos por varios aislados del género Bacillus. Un estudio publicado previamente por Senthil-Nathan et al. descubrió que el 100% de las larvas de mosquito expuestas a lagunas de plantas tenían probabilidades de morir. 74.
Evaluar los efectos subletales de los insecticidas en la biología de los insectos es fundamental para los programas de manejo integrado de plagas porque las dosis/concentraciones subletales no matan a los insectos, pero pueden reducir las poblaciones de insectos en generaciones futuras al alterar las características biológicas10. Siqueira et al 75 observaron una actividad larvicida completa (100% de mortalidad) del biosurfactante ramnolípido (300 mg/ml) cuando se probó en diversas concentraciones que oscilaban entre 50 y 300 mg/ml. Estado larvario de cepas de Aedes aegypti. Analizaron los efectos del tiempo transcurrido hasta la muerte y las concentraciones subletales sobre la supervivencia de las larvas y la actividad de natación. Además, observaron una disminución en la velocidad de natación después de 24 a 48 horas de exposición a concentraciones subletales de biosurfactante (p. ej., 50 mg/ml y 100 mg/ml). Se cree que los venenos que tienen funciones subletales prometedoras son más eficaces para causar daños múltiples a las plagas expuestas76.
Las observaciones histológicas de nuestros resultados indican que los biosurfactantes producidos por Enterobacter cloacae SJ2 alteran significativamente los tejidos de las larvas de mosquitos (Cx. quinquefasciatus) y termitas (O. obesus). Anomalías similares fueron causadas por preparaciones de aceite de albahaca en An. gambiaes.s y An. arabica fueron descritas por Ochola77. Kamaraj et al.78 también describieron las mismas anomalías morfológicas en An. Las larvas de Stephanie fueron expuestas a nanopartículas de oro. Vasantha-Srinivasan et al.79 también informaron que el aceite esencial de bolsa de pastor dañó gravemente la cámara y las capas epiteliales de Aedes albopictus. Aedes aegypti. Raghavendran et al informaron que las larvas de mosquito fueron tratadas con 500 mg/ml de extracto de micelio de un hongo Penicillium local. Los Ae muestran daño histológico severo. aegypti y Cx. Tasa de mortalidad 80. Anteriormente, Abinaya et al. Se estudiaron larvas del cuarto estadio de An. Stephensi y Ae. aegypti encontraron numerosos cambios histológicos en Aedes aegypti tratados con exopolisacáridos de B. licheniformis, incluyendo ciego gástrico, atrofia muscular, daño y desorganización de los ganglios del cordón nervioso72. Según Raghavendran et al., después del tratamiento con extracto de micelio de P. daleae, las células del intestino medio de los mosquitos analizados (larvas de cuarto estadio) mostraron hinchazón de la luz intestinal, disminución del contenido intercelular y degeneración nuclear81. Se observaron los mismos cambios histológicos en larvas de mosquito tratadas con extracto de hoja de equinácea, lo que indica el potencial insecticida de los compuestos tratados50.
El uso del software ECOSAR ha recibido reconocimiento internacional82. Las investigaciones actuales sugieren que la toxicidad aguda de los biosurfactantes ECOSAR para microalgas (C. vulgaris), peces y pulgas de agua (D. magna) cae dentro de la categoría de “toxicidad” definida por las Naciones Unidas83. El modelo de ecotoxicidad ECOSAR utiliza SAR y QSAR para predecir la toxicidad aguda y a largo plazo de sustancias y se utiliza a menudo para predecir la toxicidad de contaminantes orgánicos82,84.
El paraformaldehído, el tampón de fosfato de sodio (pH 7,4) y todos los demás productos químicos utilizados en este estudio se adquirieron en HiMedia Laboratories, India.
La producción de biosurfactante se llevó a cabo en matraces Erlenmeyer de 500 ml que contenían 200 ml de medio Bushnell Haas estéril suplementado con 1% de petróleo crudo como única fuente de carbono. Se inoculó un precultivo de Enterobacter cloacae SJ2 (1,4 × 104 UFC/ml) y se cultivó en un agitador orbital a 37 °C, 200 rpm durante 7 días. Después del período de incubación, el biosurfactante se extrajo centrifugando el medio de cultivo a 3400 xg durante 20 minutos a 4 °C y el sobrenadante resultante se usó con fines de detección. Los procedimientos de optimización y caracterización de biosurfactantes se adoptaron de nuestro estudio anterior26.
Las larvas de Culex quinquefasciatus se obtuvieron del Centro de Estudios Avanzados en Biología Marina (CAS), Palanchipetai, Tamil Nadu (India). Las larvas se criaron en recipientes de plástico llenos de agua desionizada a 27 ± 2°C y un fotoperiodo de 12:12 (luz:oscuridad). Las larvas de mosquito fueron alimentadas con una solución de glucosa al 10%.
Se han encontrado larvas de Culex quinquefasciatus en fosas sépticas abiertas y desprotegidas. Utilice directrices de clasificación estándar para identificar y cultivar larvas en el laboratorio85. Los ensayos con larvicidas se llevaron a cabo de acuerdo con las recomendaciones de la Organización Mundial de la Salud 86 . SH. Las larvas del cuarto estadio de quinquefasciatus se recogieron en tubos cerrados en grupos de 25 ml y 50 ml con un espacio de aire de dos tercios de su capacidad. Se añadió biosurfactante (0–50 mg/ml) a cada tubo individualmente y se almacenó a 25 °C. El tubo de control utilizó únicamente agua destilada (50 ml). Se consideraron larvas muertas aquellas que no mostraron signos de nadar durante el período de incubación (12 a 48 horas) 87 . Calcule el porcentaje de mortalidad larval usando la ecuación. (1)88.
La familia Odontotermitidae incluye la termita india Odontotermes obesus, que se encuentra en troncos podridos en el Campus Agrícola (Universidad de Annamalai, India). Pruebe este biosurfactante (0 a 50 mg/ml) utilizando procedimientos normales para determinar si es perjudicial. Después de secar en flujo de aire laminar durante 30 minutos, cada tira de papel Whatman se recubrió con biosurfactante en una concentración de 30, 40 o 50 mg/ml. Se probaron y compararon tiras de papel prerrevestidas y no revestidas en el centro de una placa de Petri. Cada placa de Petri contiene una treintena de termitas activas O. obesus. A las termitas de control y de prueba se les dio papel húmedo como fuente de alimento. Todas las placas se mantuvieron a temperatura ambiente durante todo el período de incubación. Las termitas murieron a las 12, 24, 36 y 48 horas89,90. Luego se utilizó la ecuación 1 para estimar el porcentaje de mortalidad de termitas en diferentes concentraciones de biosurfactante. (2).
Las muestras se mantuvieron en hielo y se empaquetaron en microtubos que contenían 100 ml de tampón de fosfato de sodio 0,1 M (pH 7,4) y se enviaron al Laboratorio Central de Patología de la Acuicultura (CAPL) del Centro Rajiv Gandhi de Acuicultura (RGCA). Laboratorio de Histología, Sirkali, Mayiladuthurai. Distrito, Tamil Nadu, India para un análisis más detallado. Las muestras se fijaron inmediatamente en paraformaldehído al 4% a 37°C durante 48 horas.
Después de la fase de fijación, el material se lavó tres veces con tampón fosfato de sodio 0,1 M (pH 7,4), se deshidrató gradualmente en etanol y se empapó en resina LEICA durante 7 días. Luego, la sustancia se coloca en un molde de plástico lleno de resina y polimerizador, y luego se coloca en un horno calentado a 37°C hasta que el bloque que contiene la sustancia esté completamente polimerizado.
Después de la polimerización, los bloques se cortaron usando un micrótomo LEICA RM2235 (Rankin Biomedical Corporation 10,399 Enterprise Dr. Davisburg, MI 48,350, EE. UU.) hasta un espesor de 3 mm. Las secciones están agrupadas en diapositivas, con seis secciones por diapositiva. Los portaobjetos se secaron a temperatura ambiente, luego se tiñeron con hematoxilina durante 7 minutos y se lavaron con agua corriente durante 4 minutos. Además, aplique la solución de eosina sobre la piel durante 5 minutos y enjuague con agua corriente durante 5 minutos.
La toxicidad aguda se predijo utilizando organismos acuáticos de diferentes niveles tropicales: CL50 de peces de 96 horas, CL50 de D. magna de 48 horas y EC50 de algas verdes de 96 horas. La toxicidad de los biosurfactantes ramnolípidos para peces y algas verdes se evaluó utilizando el software ECOSAR versión 2.2 para Windows desarrollado por la Agencia de Protección Ambiental de EE. UU. (Disponible en línea en https://www.epa.gov/tsca-screening-tools/ecological-struct-activity-relationships-ecosar-predictive-model).
Todas las pruebas de actividad larvicida y antitermitas se realizaron por triplicado. Se realizó una regresión no lineal (logaritmo de las variables dosis-respuesta) de los datos de mortalidad de larvas y termitas para calcular la concentración letal media (CL50) con un intervalo de confianza del 95 %, y se generaron curvas de concentración-respuesta utilizando Prism® (versión 8.0, GraphPad Software) Inc. Estados Unidos) 84, 91.
El presente estudio revela el potencial de los biosurfactantes microbianos producidos por Enterobacter cloacae SJ2 como agentes larvicidas y antitermitas para mosquitos, y este trabajo contribuirá a una mejor comprensión de los mecanismos de acción larvicida y antitermitas. Los estudios histológicos de larvas tratadas con biosurfactantes mostraron daños en el tracto digestivo, el intestino medio, la corteza cerebral e hiperplasia de las células epiteliales intestinales. Resultados: La evaluación toxicológica de la actividad antitermitas y larvicida del biosurfactante ramnolípido producido por Enterobacter cloacae SJ2 reveló que este aislado es un biopesticida potencial para el control de enfermedades transmitidas por vectores de mosquitos (Cx quinquefasciatus) y termitas (O. obesus). Es necesario comprender la toxicidad ambiental subyacente de los biosurfactantes y sus posibles impactos ambientales. Este estudio proporciona una base científica para evaluar el riesgo ambiental de los biosurfactantes.
Hora de publicación: 09-abr-2024