El uso generalizado de pesticidas sintéticos ha generado numerosos problemas, como la aparición de organismos resistentes, la degradación ambiental y daños a la salud humana. Por lo tanto, nuevos microorganismos...pesticidasque sean seguros para la salud humana y el medio ambiente se necesitan con urgencia. En este estudio, el biosurfactante ramnolípido producido por Enterobacter cloacae SJ2 se utilizó para evaluar la toxicidad en larvas de mosquitos (Culex quinquefasciatus) y termitas (Odontotermes obesus). Los resultados mostraron que hubo una tasa de mortalidad dependiente de la dosis entre los tratamientos. El valor de LC50 (concentración letal del 50%) a las 48 horas para biosurfactantes de termitas y larvas de mosquitos se determinó utilizando un método de ajuste de curva de regresión no lineal. Los resultados mostraron que los valores de LC50 a las 48 horas (intervalo de confianza del 95%) de la actividad larvicida y antitermitas del biosurfactante fueron 26,49 mg/L (rango de 25,40 a 27,57) y 33,43 mg/L (rango de 31,09 a 35,68) respectivamente. Según el examen histopatológico, el tratamiento con biosurfactantes causó graves daños en los tejidos de los orgánulos de larvas y termitas. Los resultados de este estudio indican que el biosurfactante microbiano producido por Enterobacter cloacae SJ2 es una herramienta excelente y potencialmente eficaz para el control de Cx. quinquefasciatus y O. obesus.
Los países tropicales experimentan una gran cantidad de enfermedades transmitidas por mosquitos1. La relevancia de las enfermedades transmitidas por mosquitos es generalizada. Más de 400,000 personas mueren de malaria cada año, y algunas ciudades importantes están experimentando epidemias de enfermedades graves como el dengue, la fiebre amarilla, el chikungunya y el Zika.2 Las enfermedades transmitidas por vectores están asociadas con una de cada seis infecciones en todo el mundo, y los mosquitos causan los casos más significativos3,4. Culex, Anopheles y Aedes son los tres géneros de mosquitos más comúnmente asociados con la transmisión de enfermedades5. La prevalencia del dengue, una infección transmitida por el mosquito Aedes aegypti, ha aumentado en la última década y representa una amenaza significativa para la salud pública4,7,8. Según la Organización Mundial de la Salud (OMS), más del 40% de la población mundial está en riesgo de contraer dengue, con 50 a 100 millones de casos nuevos que ocurren anualmente en más de 100 países9,10,11. El dengue se ha convertido en un importante problema de salud pública debido al aumento de su incidencia a nivel mundial12,13,14. El Anopheles gambiae, comúnmente conocido como mosquito Anopheles africano, es el principal vector de la malaria humana en regiones tropicales y subtropicales15. El virus del Nilo Occidental, la encefalitis de San Luis, la encefalitis japonesa y las infecciones virales de caballos y aves son transmitidas por mosquitos Culex, a menudo llamados mosquitos domésticos comunes. Además, también son portadores de enfermedades bacterianas y parasitarias16. Existen más de 3000 especies de termitas en el mundo, y han existido durante más de 150 millones de años17. La mayoría de las plagas viven en el suelo y se alimentan de madera y productos derivados de la madera que contienen celulosa. La termita india Odontotermes obesus es una plaga importante que causa graves daños a cultivos importantes y árboles de plantaciones18. En zonas agrícolas, las infestaciones de termitas en diversas etapas pueden causar enormes daños económicos a diversos cultivos, especies de árboles y materiales de construcción. Las termitas también pueden causar problemas de salud humana19.
El problema de la resistencia de microorganismos y plagas en los sectores farmacéutico y agrícola actual es complejo20,21. Por lo tanto, ambas compañías deberían buscar nuevos antimicrobianos rentables y biopesticidas seguros. Los pesticidas sintéticos ya están disponibles y han demostrado ser infecciosos y repeler insectos benéficos no objetivo22. En los últimos años, la investigación sobre biosurfactantes se ha expandido debido a su aplicación en diversas industrias. Los biosurfactantes son muy útiles y vitales en la agricultura, la remediación de suelos, la extracción de petróleo, la eliminación de bacterias e insectos, y el procesamiento de alimentos23,24. Los biosurfactantes o surfactantes microbianos son productos químicos biosurfactantes producidos por microorganismos como bacterias, levaduras y hongos en hábitats costeros y áreas contaminadas con petróleo25,26. Los surfactantes y biosurfactantes de origen químico son dos tipos que se obtienen directamente del entorno natural27. Varios biosurfactantes se obtienen de hábitats marinos28,29. Por lo tanto, los científicos buscan nuevas tecnologías para la producción de biosurfactantes basados en bacterias naturales30,31. Los avances en dichas investigaciones demuestran la importancia de estos compuestos biológicos para la protección del medio ambiente32. Bacillus, Pseudomonas, Rhodococcus, Alcaligenes, Corynebacterium y estos géneros bacterianos son representantes bien estudiados23,33.
Existen numerosos tipos de biosurfactantes con una amplia gama de aplicaciones34. Una ventaja significativa de estos compuestos es que algunos de ellos presentan actividad antibacteriana, larvicida e insecticida. Esto significa que pueden utilizarse en las industrias agrícola, química, farmacéutica y cosmética35,36,37,38. Dado que los biosurfactantes son generalmente biodegradables y beneficiosos para el medio ambiente, se utilizan en programas de gestión integrada de plagas para proteger los cultivos39. Por lo tanto, se ha obtenido un conocimiento básico sobre la actividad larvicida y antitermitas de los biosurfactantes microbianos producidos por Enterobacter cloacae SJ2. Examinamos la mortalidad y los cambios histológicos al ser expuestos a diferentes concentraciones de biosurfactantes ramnolípidos. Además, evaluamos el programa informático de amplia utilización Ecological Structure-Activity (ECOSAR) para determinar la toxicidad aguda en microalgas, dafnias y peces.
En este estudio, se evaluó la actividad antitermitas (toxicidad) de biosurfactantes purificados en diversas concentraciones, de 30 a 50 mg/ml (a intervalos de 5 mg/ml), contra termitas de la India, O. obesus y la cuarta especie. Larvas de mosquitos quinquefasciatus. Concentraciones de CL50 del biosurfactante durante 48 horas contra O. obesus y C. solanacearum. Las larvas de mosquito se identificaron mediante un método de ajuste de curvas de regresión no lineal. Los resultados mostraron que la mortalidad de termitas aumentó con el aumento de la concentración de biosurfactante. Los resultados mostraron que el biosurfactante presentó actividad larvicida (Figura 1) y actividad antitermitas (Figura 2), con valores de CL50 a las 48 horas (IC del 95%) de 26,49 mg/L (25,40 a 27,57) y 33,43 mg/L (Fig. 31,09 a 35,68), respectivamente (Tabla 1). En términos de toxicidad aguda (48 horas), el biosurfactante se clasificó como “nocivo” para los organismos evaluados. El biosurfactante producido en este estudio mostró una excelente actividad larvicida con una mortalidad del 100% dentro de las 24-48 horas posteriores a la exposición.
Calcule el valor de CL50 para la actividad larvicida. Ajuste de la curva de regresión no lineal (línea continua) e intervalo de confianza del 95 % (área sombreada) para la mortalidad relativa (%).
Calcule el valor de CL50 para la actividad antitermitas. Ajuste de la curva de regresión no lineal (línea continua) e intervalo de confianza del 95 % (área sombreada) para la mortalidad relativa (%).
Al final del experimento, se observaron cambios morfológicos y anomalías al microscopio. Se observaron cambios morfológicos en los grupos control y tratado con un aumento de 40x. Como se muestra en la Figura 3, se observó un deterioro del crecimiento en la mayoría de las larvas tratadas con biosurfactantes. La Figura 3a muestra una Cx. quinquefasciatus normal; la Figura 3b muestra una Cx. anómala. Causa cinco larvas de nematodos.
Efecto de dosis subletales (CL50) de biosurfactantes en el desarrollo de larvas de Culex quinquefasciatus. Imagen de microscopía óptica (a) de una Cx normal a 40 aumentos. quinquefasciatus (b) Cx anormal. Causa cinco larvas de nematodos.
En el presente estudio, el examen histológico de las larvas tratadas (Fig. 4) y las termitas (Fig. 5) reveló diversas anomalías, como reducción del área abdominal y daño a los músculos, las capas epiteliales y la piel del intestino medio. La histología reveló el mecanismo de la actividad inhibitoria del biosurfactante utilizado en este estudio.
Histopatología de larvas de Cx quinquefasciatus de 4.º estadio, normales y sin tratamiento (control: (a, b)) y tratadas con biosurfactante (tratamiento: (c, d)). Las flechas indican el epitelio intestinal (epi), los núcleos (n) y el músculo (mu) tratados. Barra = 50 µm.
Histopatología de O. obesus normal sin tratamiento (control: (a, b)) y tratado con biosurfactante (tratamiento: (c, d)). Las flechas indican el epitelio intestinal (epi) y el músculo (mu), respectivamente. Barra = 50 µm.
En este estudio, se utilizó ECOSAR para predecir la toxicidad aguda de productos biosurfactantes ramnolípidos para productores primarios (algas verdes), consumidores primarios (pulgas de agua) y consumidores secundarios (peces). Este programa utiliza sofisticados modelos cuantitativos de estructura-actividad de compuestos para evaluar la toxicidad basándose en la estructura molecular. El modelo utiliza software de estructura-actividad (SAR) para calcular la toxicidad aguda y a largo plazo de las sustancias para las especies acuáticas. En concreto, la Tabla 2 resume las concentraciones letales medias (CL50) y las concentraciones efectivas medias (CE50) estimadas para varias especies. La toxicidad sospechada se clasificó en cuatro niveles utilizando el Sistema Globalmente Armonizado de Clasificación y Etiquetado de Sustancias Químicas (Tabla 3).
Control de enfermedades transmitidas por vectores, especialmente cepas de mosquitos y mosquitos Aedes. Egipcios, ahora trabajo difícil 40,41,42,43,44,45,46. Aunque algunos pesticidas químicamente disponibles, como los piretroides y organofosforados, son algo beneficiosos, plantean riesgos significativos para la salud humana, incluyendo diabetes, trastornos reproductivos, trastornos neurológicos, cáncer y enfermedades respiratorias. Además, con el tiempo, estos insectos pueden volverse resistentes a ellos13,43,48. Por lo tanto, las medidas de control biológico efectivas y respetuosas con el medio ambiente se convertirán en un método más popular de control de mosquitos49,50. Benelli51 sugirió que el control temprano de los mosquitos vectores sería más efectivo en áreas urbanas, pero no recomendaron el uso de larvicidas en áreas rurales52. Tom et al 53 también sugirieron que controlar mosquitos en sus etapas inmaduras sería una estrategia segura y simple porque son más sensibles a los agentes de control 54.
La producción de biosurfactantes por una cepa potente (Enterobacter cloacae SJ2) mostró una eficacia consistente y prometedora. Nuestro estudio previo informó que Enterobacter cloacae SJ2 optimiza la producción de biosurfactantes utilizando parámetros fisicoquímicos26. Según su estudio, las condiciones óptimas para la producción de biosurfactantes por un aislado potencial de E. cloacae fueron incubación durante 36 horas, agitación a 150 rpm, pH 7,5, 37 °C, salinidad 1 ppt, 2 % de glucosa como fuente de carbono, 1 % de levadura. El extracto se utilizó como fuente de nitrógeno para obtener 2,61 g/L de biosurfactante. Además, los biosurfactantes se caracterizaron mediante TLC, FTIR y MALDI-TOF-MS. Esto confirmó que el ramnolípido es un biosurfactante. Los biosurfactantes glicolipídicos son la clase más estudiada de otros tipos de biosurfactantes55. Consisten en partes de carbohidratos y lípidos, principalmente cadenas de ácidos grasos. Entre los glicolípidos, los principales representantes son el ramnolípido y el soforolípido56. Los ramnolípidos contienen dos grupos de ramnosa unidos al ácido mono- o di-β-hidroxidecanoico 57 . El uso de ramnolípidos en las industrias médica y farmacéutica está bien establecido 58 , además de su uso reciente como pesticidas 59 .
La interacción del biosurfactante con la región hidrofóbica del sifón respiratorio permite que el agua pase a través de su cavidad estomática, aumentando así el contacto de las larvas con el medio acuático. La presencia de biosurfactantes también afecta a la tráquea, cuya longitud está cerca de la superficie, lo que facilita que las larvas se arrastren a la superficie y respiren. Como resultado, la tensión superficial del agua disminuye. Dado que las larvas no pueden adherirse a la superficie del agua, caen al fondo del tanque, alterando la presión hidrostática, lo que resulta en un gasto energético excesivo y la muerte por ahogamiento38,60. Resultados similares fueron obtenidos por Ghribi61, donde un biosurfactante producido por Bacillus subtilis exhibió actividad larvicida contra Ephestia kuehniella. De manera similar, la actividad larvicida de Cx. Das y Mukherjee23 también evaluaron el efecto de los lipopéptidos cíclicos en larvas de quinquefasciatus.
Los resultados de este estudio se refieren a la actividad larvicida de los biosurfactantes ramnolípidos contra Cx. La eliminación de mosquitos quinquefasciatus es consistente con resultados publicados previamente. Por ejemplo, se utilizan biosurfactantes basados en surfactinas producidos por varias bacterias del género Bacillus. y Pseudomonas spp. Algunos informes tempranos64,65,66 informaron la actividad de eliminación de larvas de biosurfactantes lipopeptídicos de Bacillus subtilis23. Deepali et al. 63 encontraron que el biosurfactante ramnolípido aislado de Stenotropomonas maltophilia tenía una potente actividad larvicida a una concentración de 10 mg/L. Silva et al. 67 informaron la actividad larvicida del biosurfactante ramnolípido contra Ae a una concentración de 1 g/L. Aedes aegypti. Kanakdande et al. 68 informaron que los biosurfactantes lipopeptídicos producidos por Bacillus subtilis causaron mortalidad general en larvas de Culex y termitas con la fracción lipofílica de Eucalyptus. De igual manera, Masendra et al. 69 informaron una mortalidad del 61,7 % en hormigas obreras (Cryptotermes cynocephalus Light.) en las fracciones lipofílicas de n-hexano y EtOAc del extracto crudo de E.
Parthipan et al. 70 informaron sobre el uso insecticida de biosurfactantes lipopeptídicos producidos por Bacillus subtilis A1 y Pseudomonas stutzeri NA3 contra Anopheles Stephensi, vector del parásito de la malaria Plasmodium. Observaron que las larvas y pupas sobrevivieron más tiempo, tuvieron periodos de oviposición más cortos, fueron estériles y tuvieron una vida más corta al ser tratadas con diferentes concentraciones de biosurfactantes. Los valores de CL50 observados del biosurfactante A1 de B. subtilis fueron 3,58, 4,92, 5,37, 7,10 y 7,99 mg/L para diferentes estados larvarios (es decir, larvas I, II, III, IV y estadio de pupa), respectivamente. En comparación, las concentraciones de biosurfactantes para los estadios larvarios I-IV y pupales de Pseudomonas stutzeri NA3 fueron de 2,61, 3,68, 4,48, 5,55 y 6,99 mg/L, respectivamente. Se cree que el retraso en la fenología de las larvas y pupas supervivientes se debe a importantes alteraciones fisiológicas y metabólicas causadas por los tratamientos con insecticidas71.
La cepa CCMA 0358 de Wickerhamomyces anomalus produce un biosurfactante con un 100% de actividad larvicida contra mosquitos Aedes aegypti. El intervalo de 24 horas 38 fue mayor que el reportado por Silva et al. Un biosurfactante producido a partir de Pseudomonas aeruginosa utilizando aceite de girasol como fuente de carbono ha demostrado matar al 100% de las larvas en 48 horas 67. Abinaya et al.72 y Pradhan et al.73 también demostraron los efectos larvicidas o insecticidas de los surfactantes producidos por varios aislados del género Bacillus. Un estudio publicado previamente por Senthil-Nathan et al. encontró que el 100% de las larvas de mosquito expuestas a lagunas vegetales tenían probabilidad de morir. 74.
La evaluación de los efectos subletales de los insecticidas en la biología de los insectos es fundamental para los programas de manejo integrado de plagas, ya que las dosis o concentraciones subletales no matan a los insectos, pero pueden reducir las poblaciones de insectos en futuras generaciones al alterar las características biológicas10. Siqueira et al. 75 observaron una actividad larvicida completa (100 % de mortalidad) del biosurfactante ramnolípido (300 mg/ml) cuando se probó en varias concentraciones que iban de 50 a 300 mg/ml. Estadio larval de cepas de Aedes aegypti. Analizaron los efectos del tiempo hasta la muerte y las concentraciones subletales en la supervivencia larval y la actividad natatoria. Además, observaron una disminución en la velocidad natatoria después de 24 a 48 horas de exposición a concentraciones subletales de biosurfactante (p. ej., 50 mg/mL y 100 mg/mL). Se cree que los venenos que tienen funciones subletales prometedoras son más eficaces para causar daños múltiples a las plagas expuestas76.
Las observaciones histológicas de nuestros resultados indican que los biosurfactantes producidos por Enterobacter cloacae SJ2 alteran significativamente los tejidos de larvas de mosquitos (Cx. quinquefasciatus) y termitas (O. obesus). Anomalías similares fueron causadas por preparaciones de aceite de albahaca en An. gambiaes.s y An. arabica fueron descritas por Ochola77. Kamaraj et al.78 también describieron las mismas anormalidades morfológicas en An. Las larvas de Stephanie fueron expuestas a nanopartículas de oro. Vasantha-Srinivasan et al.79 también informaron que el aceite esencial de bolsa de pastor dañó severamente la cámara y las capas epiteliales de Aedes albopictus. Aedes aegypti. Raghavendran et al informaron que las larvas de mosquito fueron tratadas con 500 mg/ml de extracto micelial de un hongo Penicillium local. Ae muestran daño histológico severo. aegypti y Cx. Tasa de mortalidad 80. Previamente, Abinaya et al. Stephensi y Ae. aegypti estudiaron larvas de cuarto estadio de An. encontraron numerosos cambios histológicos en Aedes aegypti tratados con exopolisacáridos de B. licheniformis, incluyendo ciego gástrico, atrofia muscular, daño y desorganización de los ganglios del cordón nervioso72. Según Raghavendran et al., después del tratamiento con extracto micelial de P. daleae, las células del intestino medio de los mosquitos evaluados (larvas de cuarto estadio) mostraron hinchazón del lumen intestinal, una disminución en el contenido intercelular y degeneración nuclear81. Se observaron los mismos cambios histológicos en larvas de mosquito tratadas con extracto de hoja de equinácea, lo que indica el potencial insecticida de los compuestos tratados50.
El uso del software ECOSAR ha recibido reconocimiento internacional82. Investigaciones actuales sugieren que la toxicidad aguda de los biosurfactantes ECOSAR para microalgas (C. vulgaris), peces y pulgas de agua (D. magna) se encuentra dentro de la categoría de "toxicidad" definida por las Naciones Unidas83. El modelo de ecotoxicidad ECOSAR utiliza SAR y QSAR para predecir la toxicidad aguda y a largo plazo de sustancias y se utiliza a menudo para predecir la toxicidad de contaminantes orgánicos82,84.
El paraformaldehído, el tampón de fosfato de sodio (pH 7,4) y todos los demás productos químicos utilizados en este estudio se adquirieron en HiMedia Laboratories, India.
La producción de biosurfactante se llevó a cabo en matraces Erlenmeyer de 500 mL con 200 mL de medio Bushnell Haas estéril suplementado con 1 % de aceite crudo como única fuente de carbono. Se inoculó un precultivo de Enterobacter cloacae SJ2 (1,4 × 10⁻¹ UFC/ml) y se cultivó en un agitador orbital a 37 °C y 200 rpm durante 7 días. Tras el periodo de incubación, se extrajo el biosurfactante centrifugando el medio de cultivo a 3400 × g durante 20 min a 4 °C, y el sobrenadante resultante se utilizó para el cribado. Los procedimientos de optimización y caracterización de biosurfactantes se adoptaron de nuestro estudio previo26.
Las larvas de Culex quinquefasciatus se obtuvieron del Centro de Estudios Avanzados en Biología Marina (CAS), Palanchipetai, Tamil Nadu (India). Se criaron en recipientes de plástico con agua desionizada a 27 ± 2 °C y un fotoperiodo de 12:12 (luz:oscuridad). Las larvas de mosquito se alimentaron con una solución de glucosa al 10 %.
Se han encontrado larvas de Culex quinquefasciatus en fosas sépticas abiertas y sin protección. Utilice las directrices de clasificación estándar para identificar y cultivar larvas en el laboratorio85. Se llevaron a cabo ensayos larvicidas de acuerdo con las recomendaciones de la Organización Mundial de la Salud 86 . SH. Se recolectaron larvas de cuarto estadio de quinquefasciatus en tubos cerrados en grupos de 25 ml y 50 ml con un espacio de aire de dos tercios de su capacidad. Se añadió biosurfactante (0–50 mg/ml) a cada tubo individualmente y se almacenó a 25 °C. El tubo de control utilizó solo agua destilada (50 ml). Se consideraron larvas muertas aquellas que no mostraron signos de natación durante el período de incubación (12–48 horas) 87 . Calcule el porcentaje de mortalidad larvaria utilizando la ecuación. (1)88.
La familia Odontotermitidae incluye la termita india Odontotermes obesus, encontrada en troncos podridos en el Campus Agrícola (Universidad de Annamalai, India). Pruebe este biosurfactante (0–50 mg/ml) usando procedimientos normales para determinar si es dañino. Después de secar en flujo de aire laminar durante 30 min, cada tira de papel Whatman se recubrió con biosurfactante a una concentración de 30, 40 o 50 mg/ml. Las tiras de papel pre-recubiertas y sin recubrir se probaron y compararon en el centro de una placa de Petri. Cada placa de Petri contiene alrededor de treinta termitas activas O. obesus. Las termitas de control y de prueba recibieron papel húmedo como fuente de alimento. Todas las placas se mantuvieron a temperatura ambiente durante todo el período de incubación. Las termitas murieron después de 12, 24, 36 y 48 horas89,90. Luego se utilizó la Ecuación 1 para estimar el porcentaje de mortalidad de termitas a diferentes concentraciones de biosurfactante. (2).
Las muestras se conservaron en hielo y se envasaron en microtubos con 100 ml de solución tampón de fosfato de sodio 0,1 M (pH 7,4). Se enviaron al Laboratorio Central de Patología Acuícola (CAPL) del Centro Rajiv Gandhi de Acuicultura (RGCA), Laboratorio de Histología, Sirkali, Distrito de Mayiladuthurai, Tamil Nadu, India, para su posterior análisis. Las muestras se fijaron inmediatamente en paraformaldehído al 4 % a 37 °C durante 48 horas.
Tras la fase de fijación, el material se lavó tres veces con tampón de fosfato de sodio 0,1 M (pH 7,4), se deshidrató gradualmente en etanol y se sumergió en resina LEICA durante 7 días. A continuación, la sustancia se colocó en un molde de plástico lleno de resina y polimerizador, y posteriormente en un horno calentado a 37 °C hasta que el bloque que contiene la sustancia se polimerizó por completo.
Tras la polimerización, los bloques se cortaron con un micrótomo LEICA RM2235 (Rankin Biomedical Corporation, 10,399 Enterprise Dr. Davisburg, MI 48,350, EE. UU.) hasta un grosor de 3 mm. Las secciones se agruparon en portaobjetos, con seis secciones por portaobjetos. Los portaobjetos se secaron a temperatura ambiente, se tiñeron con hematoxilina durante 7 minutos y se lavaron con agua corriente durante 4 minutos. Además, se aplicó la solución de eosina sobre la piel durante 5 minutos y se enjuagó con agua corriente durante 5 minutos.
La toxicidad aguda se predijo utilizando organismos acuáticos de diferentes niveles tropicales: CL50 de 96 horas para peces, CL50 de 48 horas para D. magna y CE50 de 96 horas para algas verdes. La toxicidad de los biosurfactantes ramnolípidos para peces y algas verdes se evaluó utilizando el software ECOSAR versión 2.2 para Windows, desarrollado por la Agencia de Protección Ambiental de los Estados Unidos (EPA). (Disponible en línea en https://www.epa.gov/tsca-screening-tools/ecological-struct-activity-relationships-ecosar-predictive-model).
Todas las pruebas de actividad larvicida y antitermitas se realizaron por triplicado. Se realizó una regresión no lineal (logaritmo de las variables dosis-respuesta) de los datos de mortalidad de larvas y termitas para calcular la concentración letal media (CL50) con un intervalo de confianza del 95%. Las curvas de concentración-respuesta se generaron con Prism® (versión 8.0, GraphPad Software) Inc., EE. UU. 84, 91.
El presente estudio revela el potencial de los biosurfactantes microbianos producidos por Enterobacter cloacae SJ2 como agentes larvicidas y antitermitas de mosquitos, y este trabajo contribuirá a una mejor comprensión de los mecanismos de acción larvicidas y antitermitas. Estudios histológicos de larvas tratadas con biosurfactantes mostraron daño al tracto digestivo, intestino medio, corteza cerebral e hiperplasia de células epiteliales intestinales. Resultados: La evaluación toxicológica de la actividad antitermitas y larvicida del biosurfactante ramnolípido producido por Enterobacter cloacae SJ2 reveló que este aislado es un biopesticida potencial para el control de enfermedades transmitidas por vectores de mosquitos (Cx quinquefasciatus) y termitas (O. obesus). Existe la necesidad de comprender la toxicidad ambiental subyacente de los biosurfactantes y sus posibles impactos ambientales. Este estudio proporciona una base científica para evaluar el riesgo ambiental de los biosurfactantes.
Hora de publicación: 09-abr-2024